MỞ ĐẦU
1. ĐẶT VẤN ĐỀ
Khoai tây (Solanum tuberosum L.) là một cây lương thực chủ lực đứng đầu trong các loại cây lấy củ trên thế giới và đứng thứ 5 trong số các cây lương thực nói chung (chỉ sau lúa mì, gạo, ngô, đậu tương). Củ khoai tây có giá trị dinh dưỡng cao, được chế biến thành hàng trăm món ăn đặc sắc, ngon miệng và có lợi cho sức khoẻ con người. Củ khoai tây còn là nguyên liệu quan trọng trong ngành công nghiệp, chế biến thức ăn cho gia súc. Ngoài ra, khoai tây còn là một dược phẩm dùng để chữa trị nhiều bệnh như khó tiêu, đau bụng, viêm loét dạ dày, say nắng Với những lợi ích to lớn đó, khoai tây đã được trồng ở hơn 130 quốc gia và là một nguồn thu lớn cho hàng triệu nông dân [5].
Ở khoai tây, bệnh virus đã trở thành một hiểm họa. Người ta thấy có ít nhất 38 loại virus trên khoai tây đã được phát hiện và mô tả, phổ biến là: PVY (potato virus Y), PLRV (potato leafroll virus), PVX (potato virus X), PVA (potato virus A), PVS (potato virus S) Trong đó, PVY gần đây được xem là virus gây bệnh nghiêm trọng nhất (Kerlan, 2008) [40]. Chúng làm giảm kích thước, số lượng cũng như chất lượng củ khoai tây, gây thiệt hại kinh tế tới
80% thậm chí còn hơn (Kerlan và cs, 2008) [41].
Mặc dù vậy, nhận thức của nông dân cũng như những nghiên cứu về bệnh virus trên khoai tây ở nước ta còn rất hạn chế so với các nước Bắc Mĩ và Châu Âu. Do đó, việc chẩn đoán nhanh, chính xác nhằm đưa ra những biện pháp phòng trừ bệnh thích hợp để hạn chế tối đa những thiệt hại do bệnh virus gây ra là hết sức cần thiết. Hơn nữa, những biện pháp truyền thống sử dụng để ngăn cản sự lan truyền của PVY chỉ mang tính chất phòng trừ chứ không thể chống lại được bệnh này, lại tốn nhiều thời gian và công sức.
 
Gần đây, với việc áp dụng những kĩ thuật tiên tiến của sinh học phân tử vào nghiên cứu chọn tạo giống cây trồng, đặc biệt là sử dụng các vật liệu di truyền từ các virus gây bệnh để tạo cây trồng chuyển gen kháng virus đã thu được kết quả đáng khích lệ như cây khoai tây chuyển gen Nib kháng PVY.
Tạo cây khoai tây chuyển gen kháng virus được coi là một biện pháp hữu hiệu để ngăn chặn và hạn chế tác hại do virus gây ra. Nhưng vấn đề đặt ra là phổ kháng bệnh của những cây chuyển gen này phụ thuộc vào độ tương đồng về mặt di truyền của chủng virus có gen được sử dụng để tạo cây chuyển gen và các dòng virus gây bệnh trong tự nhiên. Vì vậy khảo sát tính đa dạng di truyền của gen mã hoá cho protein vỏ virus (coat protein- CP) có ý nghĩa rất quan trọng trong việc nghiên cứu tạo cây chuyển gen kháng virus.
Xuất phát từ những lí do trên, tôi lựa chọn đề tài cho luận văn thạc sĩ là: “Nghiên cứu tính đa dạng của virus Y trên khoai tây trồng tại Thái Nguyên”.
2. MỤC TIÊU NGHIÊN CỨU
Xác định sự đa dạng trong cấu trúc gen mã hoá protein vỏ (CP- coat protein) của PVY phân lập từ các mẫu lá khoai tây thu tại một số địa phương thuộc tỉnh Thái Nguyên.
3. NỘI DUNG NGHIÊN CỨU
3.1. Khảo sát, thống kê và xác định tỉ lệ nhiễm PVY trên khoai tây ở Thái Bình, Thái Nguyên, Hưng Yên, Bắc Giang làm cơ sở cho việc thu mẫu và xác định sự có mặt của virus PVY.
3.2. Tách chiết RNA của virus từ các mẫu khoai tây thu thập được.
3.3. Nhân gen CP, tách dòng và đọc trình tự gen CP của PVY trong các mẫu
khoai tây.
3.4. So sánh trình gen CP của PVY phân lập được với một số trình tự đã công bố trong ngân hàng gen NCBI.
                
              
                                            
                                
            
 
            
                 74 trang
74 trang | 
Chia sẻ: lvcdongnoi | Lượt xem: 4205 | Lượt tải: 5 
              
            Bạn đang xem trước 20 trang tài liệu Nghiên cứu tính đa dạng của virus Y trên khoai tây trồng tại Thái Nguyên, để xem tài liệu hoàn chỉnh bạn click vào nút DOWNLOAD ở trên
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  
 ĐẠI HỌC THÁI NGUYÊN 
TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM 
------------------------------ 
VŨ THỊ BƯỞI 
NGHIÊN CỨU TÍNH ĐA DẠNG CỦA VIRUS Y 
TRÊN KHOAI TÂY TRỒNG TẠI THÁI NGUYÊN 
Chuyên ngành: Di truyền học 
Mã số: 60.42.70 
TÓM TẮT LUẬN VĂN THẠC SĨ SINH HỌC 
Thái Nguyên-2009 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  
Công trình được hoàn thành tại: 
Khoa Sinh -Trường Đại học Sư phạm-Đại học Thái Nguyên 
Người hướng dẫn khoa học: PGS.TS. Chu Hoàng Mậu 
Phản biện 1:…………………………………… 
Phản biện 2:……………………………………. 
Luận văn sẽ được bảo vệ trước hội đồng chấm luận văn 
họp tại: Trường Đại học Sư phạm-Đại học Thái Nguyên 
Ngày…….tháng………năm 2009 
Có thể tìm hiểu luận văn tại thư viện Đại học Thái Nguyên 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  
ĐẠI HỌC THÁI NGUYÊN 
TRƢỜNG ĐẠI HỌC SƢ PHẠM 
------------------------------ 
VŨ THỊ BƢỞI 
NGHIÊN CỨU TÍNH ĐA DẠNG CỦA VIRUS Y 
TRÊN KHOAI TÂY TRỒNG TẠI THÁI NGUYÊN 
LUẬN VĂN THẠC SĨ SINH HỌC 
Thái Nguyên-2009 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  ii 
LỜI CẢM ƠN 
Tôi xin bày tỏ lòng biết ơn tới PGS.TS. Chu Hoàng Mậu, Phó Giám 
đốc Đại học Thái Nguyên, đã rất tận tình hƣớng dẫn, chỉ bảo và giúp đỡ tôi 
hoàn thành luận văn của mình. 
Tôi cũng xin gửi lời cảm ơn tới TS. Nguyễn Vũ Thanh Thanh (trƣờng 
Đại học Khoa học), các thầy cô giáo, cán bộ khoa sau đại học và khoa Sinh 
(trƣờng Đại học Sƣ phạm-Đại học Thái Nguyên) đã hƣớng dẫn, tạo mọi điều 
kiện cho tôi trong suốt quá trình học tập và nghiên cứu. 
Tôi xin bày tỏ lòng biết ơn tới TS. Chu Hoàng Hà, chị Phạm Thị Vân, 
Phòng Công nghệ Tế bào Thực vật-Viện Công nghệ Sinh học và các cán bộ 
phòng thí nghiệm Di truyền học, khoa Sinh-Trƣờng Đại học Sƣ phạm; phòng 
thí nghiệm thuộc khoa Sinh-Trƣờng Đại học Khoa học, Đại học Thái Nguyên 
đã nhiệt tình hƣớng dẫn, giúp đỡ để tôi có thể hoàn thành luận văn này. 
Cuối cùng, tôi xin dành cho những ngƣời thân yêu trong gia đình và 
bạn bè những lời biết ơn sâu sắc. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  iii 
LỜI CAM ĐOAN 
Tôi xin cam đoan đây là công trình nghiên cứu của riêng tôi. Các số 
liệu, kết quả nghiên cứu trong luận văn là trung thực và chƣa có ai công bố 
trong một công trình nào khác. 
Thái Nguyên, tháng 9, năm 2009 
Tác giả 
Vũ Thị Bƣởi 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  iv 
NHỮNG CHỮ VIẾT TẮT 
aa Acid amine 
DNA DeoxyribonucleicvAcid 
RNA Ribonuleic Acid 
bp Basepair 
cDNA Complementary DNA 
CP Coat protein 
cs Cộng sự 
DEPC Diethyl pyrocarbonate 
NXB Nhà xuất bản 
IPTG Isopropylthio-β-D-galactosidase 
Kb Kilobase 
LB Luria and Bertani 
RT-PCR Reverse Transcriptase – Polymerase Chain Reaction 
PVY Potato virus Y 
PVY
N 
Potato virus Y strain N 
PVY
C 
Potato virus Y strain C 
PVY
O 
Potato virus Y strain O 
PVY
NTN 
Potato virus Y strain (variant) NTN 
RNase Ribonuclease 
X-gal 5-brom-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactosidase 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  v 
DANH MỤC CÁC HÌNH 
Tên hình Trang 
Hình 1.1. Các gen kháng (màu xanh) với 4 virus chủ yếu (PVY, 
PLRV, PVX, PVA) .............................................................................. 
Hình 1.2. Những đốm (mottle) điển hình trên cây thuốc lá N. tabacum 
cv Xanthi gây ra bởi PVY khoai tây sau 15 ngày tiêm ......................... 
Hình 1.3. Hình dạng của PVY ............................................................. 
Hình 1.4. Sơ đồ mô tả hệ gen của các chủng PVYO, PVYN và các biến 
thể PVYNTN, PVYNW ........................................................................... 
Hình 1.5. Loài rệp có cánh truyền PVY (Aphis nasturtii) ..................... 
Hình 1.6. Dấu hiệu so sánh PVY trên Nicotiana tabacum cv Xanthi 
(sau 15 ngày tiêm) ............................................................................... 
Hình 1.7. Triệu chứng nhiễm lần 2 với PVY trên cánh đồng khoai tây .... 
Hình 1.8. Triệu chứng của bệnh đốm chết hoại củ khoai tây (PTNRD) .... 
Hình 1.9. Vị trí các gen kháng PVY trên genome khoai tây ................. 
Hình 2.1. Sơ đồ thí nghiệm tổng quát ................................................... 
Hình 3.1. Một số hình ảnh về khoai tây ở các vùng nghiên cứu ........... 
Hình 3.2. Kết quả RT-PCR từ RNA của các mẫu lá khoai tây nghi 
nhiễm bệnh .......................................................................................... 
Hình 3.3. Kết quả điện di DNA thu đƣợc từ kỹ thuật thôi gel trên agarose 1% ....... 
Hình 3.4. Kết quả colony-PCR một số dòng khuẩn lạc với mẫu Phổ Yên ...... 
Hình 3.5. Kết quả colony-PCR một số dòng khuẩn lạc với mẫu Phú Bình ........ 
Hình 3.6. Kết quả điện di tách plasmid mang gen CP .......................... 
Hình 3.7. So sánh trình tự nucleotide của gen CP-PVY trên 2 mẫu 
nghiên cứu ........................................................................................... 
Hình 3.8. So sánh trình tự acid amine của gen CP-PVY trên 2 mẫu 
nghiên cứu ........................................................................................... 
Hình 3.9. Biểu đồ hình cây biểu diễn mối quan hệ di truyền của CP-
PVY phân lập đƣợc từ Phổ Yên và Phú Bình với 19 trình tự trong 
ngân hàng gen ...................................................................................... 
13 
16 
16 
17 
19 
21 
22 
23 
24 
29 
39 
41 
43 
45 
46 
46 
49 
50 
52 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  vi 
DANH MỤC CÁC BẢNG 
Tên bảng Trang 
Bảng 1.1. Một số virus khoai tây thuộc nhóm 1 ............................... 
Bảng 1.2. Một số virus khoai tây thuộc nhóm 2 ............................... 
Bảng 1.3. Một số virus khoai tây thuộc nhóm 3 ............................... 
Bảng 1.4. Ảnh hƣởng của bệnh virus đến củ khoai tây ..................... 
Bảng 2.1. Danh sách các mẫu thu tại các điểm nghiên cứu .............. 
Bảng 2.2. Thành phần phản ứng PCR .............................................. 
Bảng 2.3. Chu kì nhiệt cho phản ứng PCR ....................................... 
Bảng 2.4. Thành phần phản ứng gắn gen vào vector tách dòng ........ 
Bảng 2.5. Thành phần phản ứng PCR đọc trình tự ........................... 
Bảng 2.6. Chu kì nhiệt cho phản ứng PCR đọc trình tự .................... 
Bảng 3.1. Tỉ lệ có triệu chứng bị bệnh ở các cánh đồng khoai tây 
nghiên cứu ....................................................................................... 
Bảng 3.2. Trình tự mồi đặc hiệu nhân gen CP .................................. 
Bảng 3.3. Trình tự mồi để thực hiện colony-PCR ............................ 
Bảng 3.4. 19 trình tự trong ngân hàng gen đƣợc sử dụng để đƣa ra 
so sánh ............................................................................................. 
Bảng 3.5. Hệ số giống nhau và khác nhau về trình tự nucleotide 
vùng mã hoá của gen CP ở mẫu nghiên cứu với các mẫu trên ngân 
hàng gen NCBI ................................................................................ 
8 
8 
9 
10 
28 
32 
32 
33 
35 
36 
39 
40 
45 
51 
54 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  vii 
MỤC LỤC 
MỞ ĐẦU ............................................................................................... 
Chƣơng 1. TỔNG QUAN TÀI LIỆU ..................................................... 
1.1. Cây khoai tây .................................................................................. 
1.1.1. Nguồn gốc, phân loại và giá trị của khoai tây ............................... 
1.1.2. Một số đặc điểm sinh học của cây khoai tây ................................. 
1.1.3. Tình hình sản xuất khoai tây trên thế giới và ở Việt Nam ............. 
1.2. Virus gây bệnh trên khoai tây.......................................................... 
1.2.1. Các loại virus khoai tây ................................................................ 
1.2.2. Đặc điểm chính của bệnh virus trên khoai tây .............................. 
1.3. Virus Y ở khoai tây ......................................................................... 
1.3.1. Phân loại ...................................................................................... 
1.3.2. Cây chủ ........................................................................................ 
1.3.3. Hình dạng và cấu trúc phân tử ...................................................... 
1.3.4. Quan hệ họ hàng với các potyvirus khác ...................................... 
1.3.5. Lan truyền của PVY ..................................................................... 
1.3.6. Một số đặc điểm của PVY trên khoai tây ..................................... 
1.4. Tình hình nghiên cứu PVY trên thế giới và ở Việt Nam .................. 
1.4.1. Tình hình nghiên cứu PVY trên thế giới ....................................... 
1.4.2. Tình hình nghiên cứu PVY ở Việt Nam ....................................... 
1 
3 
3 
3 
5 
5 
6 
7 
9 
14 
14 
14 
16 
17 
18 
20 
24 
24 
27 
Chƣơng 2. VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU ............... 
2.1. Vật liệu nghiên cứu ......................................................................... 
2.2. Hóa chất, thiết bị, địa điểm nghiên cứu ........................................... 
2.2.1. Hóa chất ....................................................................................... 
2.2.2. Thiết bị......................................................................................... 
2.2.3. Địa điểm nghiên cứu .................................................................... 
2.3. Phƣơng pháp nghiên cứu ................................................................. 
2.3.1. Phƣơng pháp thống kê .................................................................. 
2.3.2. Phƣơng pháp tách chiết RNA tổng số ........................................... 
28 
28 
28 
28 
28 
29 
29 
29 
30 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  viii 
2.3.3. Phƣơng pháp RT-PCR ................................................................. 31 
2.3.4. Phƣơng pháp tinh sạch sản phẩm PCR ......................................... 
2.3.5. Phƣơng pháp gắn gen vào vector tách dòng ................................. 
2.3.6. Biến nạp vector tái tổ hợp vào tế bào khả biến E.coli DH5α ........ 
2.3.7. Phƣơng pháp PCR trực tiếp từ khuẩn lạc (colony-PCR) ............... 
2.3.8. Tách chiết plasmid ....................................................................... 
2.3.9. Phƣơng pháp xác định trình tự nucleotide .................................... 
2.3.10. Phƣơng pháp xử lí trình tự gen thu đƣợc .................................... 
Chƣơng 3. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN .............................................. 
3.1. Kết quả khảo sát tỉ lệ nhiễm PVY ................................................... 
3.2. Kết quả nhân gen, tách dòng cDNA ................................................ 
3.2.1. Kết quả nhân gen bằng kỹ thuật RT-PCR ..................................... 
3.2.2. Kết quả tinh sạch sản phẩm PCR.................................................. 
3.2.3. Kết quả biến nạp vector tái tổ hợp vào tế bào khả biến E.coli DH5α. ...... 
3.2.4. Kết quả chọn lọc plasmid tái tổ hợp bằng colony-PCR................. 
3.2.5. Kết quả tách plasmid từ các khuẩn lạc của 2 mẫu nghiên cứu ...... 
3.3. Kết quả so sánh trình tự gen CP-PVY phân lập từ 2 mẫu nghiên 
cứu với một số trình tự trong ngân hàng gen .......................................... 
3.3.1. So sánh trình tự nucleotide và acid amine của gen CP-PVY trên 2 
mẫu nghiên cứu ..................................................................................... 
3.3.2. So sánh trình tự nucleotide gen CP-PVY trên 2 mẫu nghiên cứu 
với các trình tự gen CP-PVY trên khoai tây đã đƣợc công bố trong ngân 
hàng gen ................................................................................................ 
KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ ..................................................................... 
CÔNG TRÌNH ĐÃ CÔNG BỐ ............................................................... 
TÀI LIỆU THAM KHẢO....................................................................... 
33 
33 
34 
34 
34 
35 
36 
38 
38 
40 
40 
42 
43 
44 
46 
47 
47 
50 
55 
56 
57 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  1 
MỞ ĐẦU 
1. ĐẶT VẤN ĐỀ 
Khoai tây (Solanum tuberosum L.) là một cây lƣơng thực chủ lực đứng 
đầu trong các loại cây lấy củ trên thế giới và đứng thứ 5 trong số các cây 
lƣơng thực nói chung (chỉ sau lúa mì, gạo, ngô, đậu tƣơng). Củ khoai tây có 
giá trị dinh dƣỡng cao, đƣợc chế biến thành hàng trăm món ăn đặc sắc, ngon 
miệng và có lợi cho sức khoẻ con ngƣời. Củ khoai tây còn là nguyên liệu quan 
trọng trong ngành công nghiệp, chế biến thức ăn cho gia súc. Ngoài ra, khoai 
tây còn là một dƣợc phẩm dùng để chữa trị nhiều bệnh nhƣ khó tiêu, đau 
bụng, viêm loét dạ dày, say nắng…Với những lợi ích to lớn đó, khoai tây đã 
đƣợc trồng ở hơn 130 quốc gia và là một nguồn thu lớn cho hàng triệu nông 
dân [5]. 
Ở khoai tây, bệnh virus đã trở thành một hiểm họa. Ngƣời ta thấy có ít 
nhất 38 loại virus trên khoai tây đã đƣợc phát hiện và mô tả, phổ biến là: PVY 
(potato virus Y), PLRV (potato leafroll virus), PVX (potato virus X), PVA 
(potato virus A), PVS (potato virus S)…Trong đó, PVY gần đây đƣợc xem là 
virus gây bệnh nghiêm trọng nhất (Kerlan, 2008) [40]. Chúng làm giảm kích 
thƣớc, số lƣợng cũng nhƣ chất lƣợng củ khoai tây, gây thiệt hại kinh tế tới 
80% thậm chí còn hơn (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
Mặc dù vậy, nhận thức của nông dân cũng nhƣ những nghiên cứu về 
bệnh virus trên khoai tây ở nƣớc ta còn rất hạn chế so với các nƣớc Bắc Mĩ và 
Châu Âu. Do đó, việc chẩn đoán nhanh, chính xác nhằm đƣa ra những biện 
pháp phòng trừ bệnh thích hợp để hạn chế tối đa những thiệt hại do bệnh virus 
gây ra là hết sức cần thiết. Hơn nữa, những biện pháp truyền thống sử dụng để 
ngăn cản sự lan truyền của PVY chỉ mang tính chất phòng trừ chứ không thể 
chống lại đƣợc bệnh này, lại tốn nhiều thời gian và công sức. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  2 
Gần đây, với việc áp dụng những kĩ thuật tiên tiến của sinh học phân tử 
vào nghiên cứu chọn tạo giống cây trồng, đặc biệt là sử dụng các vật liệu di 
truyền từ các virus gây bệnh để tạo cây trồng chuyển gen kháng virus đã thu 
đƣợc kết quả đáng khích lệ nhƣ cây khoai tây chuyển gen Nib kháng PVY. 
Tạo cây khoai tây chuyển gen kháng virus đƣợc coi là một biện pháp 
hữu hiệu để ngăn chặn và hạn chế tác hại do virus gây ra. Nhƣng vấn đề đặt ra 
là phổ kháng bệnh của những cây chuyển gen này phụ thuộc vào độ tƣơng 
đồng về mặt di truyền của chủng virus có gen đƣợc sử dụng để tạo cây chuyển 
gen và các dòng virus gây bệnh trong tự nhiên. Vì vậy khảo sát tính đa dạng 
di truyền của gen mã hoá cho protein vỏ virus (coat protein- CP) có ý nghĩa 
rất quan trọng trong việc nghiên cứu tạo cây chuyển gen kháng virus. 
Xuất phát từ những lí do trên, tôi lựa chọn đề tài cho luận văn thạc sĩ là: 
“Nghiên cứu tính đa dạng của virus Y trên khoai tây trồng tại Thái 
Nguyên”. 
2. MỤC TIÊU NGHIÊN CỨU 
Xác định sự đa dạng trong cấu trúc gen mã hoá protein vỏ (CP- coat 
protein) của PVY phân lập từ các mẫu lá khoai tây thu tại một số địa phƣơng 
thuộc tỉnh Thái Nguyên. 
3. NỘI DUNG NGHIÊN CỨU 
3.1. Khảo sát, thống kê và xác định tỉ lệ nhiễm PVY trên khoai tây ở Thái 
Bình, Thái Nguyên, Hƣng Yên, Bắc Giang làm cơ sở cho việc thu mẫu và xác 
định sự có mặt của virus PVY. 
3.2. Tách chiết RNA của virus từ các mẫu khoai tây thu thập đƣợc. 
3.3. Nhân gen CP, tách dòng và đọc trình tự gen CP của PVY trong các mẫu 
khoai tây. 
3.4. So sánh trình gen CP của PVY phân lập đƣợc với một số trình tự đã công 
bố trong ngân hàng gen NCBI. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  3 
Chƣơng 1 
TỔNG QUAN TÀI LIỆU 
1.1. CÂY KHOAI TÂY 
1.1.1. Nguồn gốc, phân loại và giá trị của khoai tây 
Cây khoai tây có tên khoa học là Solanum tuberosum L., thuộc họ cà 
(Solanaceae). 
Khoai tây có nguồn gốc từ vùng núi Andes của Bolivia và Peru. Vào thế 
kỉ XVI, ngƣời Tây Ban Nha xâm chiếm Peru và họ đã đem cây khoai tây về 
nƣớc trồng. Đến cuối thế kỉ XVI, khoai tây đã đƣợc trồng rộng rãi ở nhiều 
nƣớc Châu Âu (Vũ Hƣớng Văn, 2007) [12], (Macdec, 1963) [45]. 
Khoai tây đƣợc du nhập vào nƣớc ta là do một ngƣời Pháp là giám đốc 
vƣờn bách thảo Hà Nội đem vào trồng thử, và nó nhanh chóng đƣợc trồng ở 
nhiều địa phƣơng. Do ngƣời Pháp là ngƣời đem cây về nƣớc ta và phổ biến 
cách trồng nên nhân dân ta gọi cây này là “khoai tây” (Vũ Hƣớng Văn, 2007) 
[12], (Macdec, 1963) [45]. 
Khoai tây vừa là cây lƣơng thực vừa là cây thực phẩm có giá trị dinh 
dƣỡng cao. Củ khoai tây chứa trung bình 19% hydratcacbon (trong đó 15% 
tinh bột; 2,2% chất xơ); 0,1% chất béo; 2-3% protein và 79% là nƣớc. Ngoài 
ra, trong khoai tây còn chứa nhiều loại vitamin và chất khoáng. Ngƣời ta đã 
tính khoảng hơn 200g khoai tây nƣớng cả vỏ cung cấp 844mg kali; 28% khẩu 
phần sắt hàng ngày; 43% khẩu phần vitamin C; 35% khẩu phần vitamin B6 và 
nhiều chất khác nhƣ niacin, thiamin, folat…. (Vũ Hƣớng Văn, 2007) [12]. 
Còn theo Bill và Dean (1992), sử dụng 100g khoai tây có thể đảm bảo ít nhất 
8% nhu cầu protein; 3% nhu cầu năng lƣợng; 10% nhu cầu sắt; 19% nhu cầu 
vitamin B1; 20-50% nhu cầu vitamin C của ngƣời trong một ngày (Bill và cs, 
1992) [18]. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  4 
Khoai tây đƣợc chế biến thành hàng trăm món ăn ngon phục vụ nhu cầu 
ẩm thực của con ngƣời. Không chỉ vậy, khoai tây còn đƣợc coi là công cụ làm 
đẹp hiệu quả và dễ sử dụng nhất. Ngoài ra, củ khoai tây cũng còn là nguyên 
liệu quan trọng của ngành công nghiệp, chế biến thức ăn trong chăn nuôi. 
Trong công nghiệp sản xuất bánh kẹo, khoai tây đã đƣợc chế biến thành nhiều 
sản phẩm thơm ngon, có giá trị dinh dƣỡng cao. Khoai tây cũng đƣợc sử dụng 
trong công nghiệp sản xuất cồn, cao su nhân tạo (Hồ Hữu An và cs, 2005) [1]. 
Đặc biệt, khoai tây cũng là một dƣợc phẩm. Củ khoai tây có vị ngọt, 
tính bình, có tác dụng bổ khí, kiện tỳ, tiêu viêm. Nó dùng để chữa chứng khó 
tiêu, đau bụng, viêm loét dạ dày, viêm tuyến nƣớc bọt, say nắng, sốt, bỏng 
nhẹ, eczema, vết thƣơng…Hoa khoai tây chữa bệnh tăng huyết áp và là 
nguyên liệu chiết rutin để chữa bệnh. Quả và mầm củ khoai tây ít đƣợc dùng 
làm thuốc vì dễ gây độc. Trong công nghiệp dƣợc phẩm, chúng đƣợc chiết lấy 
solanin để làm thuốc giảm đau, chữa đau bụng, đau nhức xƣơng khớp, chữa dị 
ứng, chống hen, viêm phế quản, động kinh (Hƣơng Tú, 2008) [11]. 
Trong củ khoai tây có nhiều chất chống oxi hoá, nó có khả năng ngăn 
ngừa quá trình lão hoá, hạn chế sự phát triển của ung thƣ và một số bệnh 
khác. Các nhà nghiên cứu tại trƣờng Đại học Y Harvard-Mỹ đã phát hiện ra 
rằng: những ngƣời thƣờng xuyên ăn khoai tây có khả năng giảm ung thƣ 
tuyến tiền liệt (Vũ Hƣớng Văn, 2007) [12]. 
Những nghiên cứu gần đây còn cho thấy củ khoai tây rất giàu sterol, 
giúp tăng cƣờng khả năng miễn dịch của cơ thể. Có nghiên cứu cho thấy, 
khoai tây có tác dụng làm chậm sự tấn công của HIV/ AIDS. Theo dõi trên 
một nhóm bệnh nhân HIV thấy những ngƣời ăn khoai tây có khả năng sống 
thêm đƣợc ít nhất 2 năm nữa so với những bệnh nhân không ăn (Vũ Hƣớng 
Văn, 2007) [12]. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  5 
1.1.2. Một số đặc điểm sinh học của cây khoai tây 
Cây khoai tây thuộc loại thân thảo, bao gồm các bộ phận thân, lá, rễ, 
hoa, quả, hạt. Thân và lá khoai tây có nhiều lông, lá kép lông chim không đối 
xứng. Hoa cân đối, cánh hoa có gốc dính liền nhau. Nhị đực kết dính thành 
ống hoặc chóp cụt, nhị cái ở trên và dễ rụng. Cây khoai tây chủ yếu là tự thụ, 
một số trƣờng hợp giao phấn. Cánh hoa có các màu: trắng, tím- đỏ, tím xanh, 
xanh thẫm. Quả có hai ô, hạt rất nhỏ có mầm uốn cong. Khoai tây thƣờng 
đƣợc nhân giống bằng củ. Củ là phần phình to của phần thân cây nằm dƣới 
đất chứa nhiều chất dinh dƣỡng (Hồ Hữu An và cs, 2005) [1], (Đƣờng Hồng 
Dật, 2005) [3], (Trƣơng Quang Vinh, 2007) [14]. 
Ở nƣớc ta, khoai tây địa phƣơng trồng phổ biến ở phía Bắc là giống 
Thƣờng Tín, và phía Nam là giống Đà Lạt. Các giống nhập nội của Trung 
Quốc, Đức, Pháp, Hà Lan…hiện đang đƣợc trồng ở nhiều nơi (Nguyễn Mạnh 
Chinh, 2005) [2]. Ở đồng bằng sông Hồng, khoai tây chủ yếu trồng ở vụ đông 
vào tháng 10, 11, thu hoạch tháng 1, 2 năm sau. Ở các tỉnh miền núi phía Bắc và 
Đà Lạt trồng muộn hơn một chút khoảng tháng 1, 2 để tránh sƣơng giá vào tháng 
11, 12 (Nguyễn Mạnh Chinh, 2005) [2]. 
1.1.3. Tình hình sản xuất khoai tây trên thế giới và ở Việt Nam 
Khoai tây đƣợc trồng phổ biến ở 130 nƣớc trên thế giới. Do điều kiện 
sinh thái, mức độ thâm canh và trình độ sản xuất khác nhau nên năng suất 
khoai tây chênh lệch rất lớn, từ 7 tấn/ha đến 65 tấn/ha. Tính đến năn 2005, 
trên thế giới trồng đƣợc 18,57 triệu ha khoai tây, sản lƣợng đạt 320,15 triệu 
tấn (bằng 60-70% tổng sản lƣợng lúa hay mì). 
Diện tích khoai tây của thế giới trong những năm gần đây có xu hƣớng 
giảm nhẹ. Năm 2005, diện tích khoai tây giảm 0,37 triệu ha so với năm 2003; 
giảm 1,37% triệu ha so với năm 2000. Tuy vậy, năng suất khoai tây trung bình 
lại có xu hƣớng tăng. Năm 2005, năng suất khoai tây tăng 0,79 tấn/ha so với 
năm 2000 và tăng 1,32 tấn/ha so với năm 2001 (FAO, 2005) [30]. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  6 
Trong những năm gần đây, ở nƣớc ta diện tích trồng khoai tây ngày một 
tăng, nhƣng tốc độ tăng không cao. Năng suất khoai tây của nƣớc ta chỉ bằng 
61,3% năng suất bình quân chung của thế giới, bằng 62,9% năng suất khoai 
tây của Châu Âu (FAO, 2005) [30]. 
Nhƣ vậy, khoai tây ở nƣớc ta đã và đang phát triển nhƣng tốc độ mở 
rộng diện tích và tăng năng suất hằng năm không cao, không ổn đinh. Có thể 
đƣa ra 2 nguyên nhân quan trọng dẫn đến hiện tƣợng này là: 
+ Thiếu giống có chất lƣợng tốt, phù hợp với điều kiện khí hậu. 
+ Chƣa có biện pháp phòng trừ bệnh đặc biệt là bệnh virus có hiệu quả 
(Trƣơng Quang Vinh, 2007) [14]. 
1.2. VIRUS GÂY BỆNH Ở KHOAI TÂY 
Hiện tƣợng thoái hoá khoai tây, do virus gây ra, đã đƣợc mô tả và phát 
hiện ngay từ thế kỉ XVIII, nhƣng tác nhân gây ra nó phải đến tận thế kỉ XX 
mới đƣợc xác định. Virus cuốn lá (potato leafroll virus viết tắt là PLRV) là 
virus đƣợc phát hiện đầu tiên vào năm 1916 bởi Quanfer, Vanderlek và O. 
Botfes. Những virus chủ yếu gây khảm trên khoai tây (potato virus M, potato 
virus X, potato virus Y, potato virus A) đƣợc xác định trong những năm 1920 
và 1930. Những virus quan trọng khác chỉ đƣợc phám phá trong những năm 
1950 (tobacco rattle virus, potato virus S) hoặc giữa những năm 1960 (potato 
mop-top virus) (Vũ Triệu Mân, 1986) [6], (Kerlan, 2008) [40]. Trong 4 thập 
kỉ gần đây, ngƣời ta đã phát hiện thấy số lƣợng virus ngày càng gia tăng ở 
châu Mỹ La Tinh, đặc biệt là trong châu thổ Andean, nơi đƣợc xem là khởi 
nguồn của khoai tây. Nhiều virus phổ biến ở các cây chủ khác, đôi khi lại 
nhiễm vào khoai tây. Một số chúng, ví dụ nhƣ virus đốm héo cà chua (tomato 
spotted wilt virus), gây bệnh cho khoai tây và có thể trở nên nghiêm trọng 
trong tƣơng lai. Nhiều tác giả cũng lƣu ý rằng, một virus truyền qua con 
đƣờng tiếp xúc, nhƣ pepino mosaic virus, cho đến nay vẫn chƣa đƣợc phát 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  7 
hiện trên khoai tây, cũng có khả năng nhiễm vào nhiều cây khoai tây quan 
trọng và trở thành một hiểm họa trong tƣơng lai. 
Những ngƣời trồng khoai tây ở nhiều quốc gia đã thừa nhận rằng khoai 
tây giống ảnh hƣởng lớn tới hiệu quả sản xuất. Chƣơng trình sản xuất khoai 
tây giống phát triển trong những năm 1940 và 1950. Khoai tây giống đƣợc 
chứng nhận với mức độ nhiễm virus thấp bây giờ đã trở thành nhân tố chính 
trong cuộc chiến chống virus. Nhân giống kháng mạnh với virus cuộn lá 
(potato leafroll virus) đƣợc sử dụng ít nhất là từ những năm 1925 và khả năng 
kháng virus của nhiều cây dại họ cà đã đƣợc khai thác. Ba kiểu kháng đƣợc 
mô tả từ những năm 1950 và thông tin di truyền về yếu tố quy định khả năng 
kháng đƣợc xác định từ những năm 1970. Hiện nay, nhiều gen chống chịu đã 
đƣợc xác định vị trí trên genome khoai tây, tạo điều kiện cho công tác nhân 
giống kháng virus dựa trên các chỉ thị phân tử. Hàng loạt những biện pháp 
mạnh đã đƣợc xác lập để tránh sự xâm nhập của các virus kiểm dịch (Kerlan, 
2008) [40]. Sử dụng vật liệu di truyền từ các virus gây bệnh để tạo cây chuyển 
gen kháng virus đƣợc xem là biện pháp hữu hiệu và đã thu đƣợc kết quả khá 
khả quan. 
1.2.1. Các loại virus khoai tây 
Ở khoai tây có ít nhất 38 virus đã đƣợc mô tả (Kerlan, 2008) [40]. Dựa 
trên mức độ thiệt hại và phạm vi phân bố, virus khoai tây đƣợc phân chia 
thành 3 nhóm: 
+ Nhóm 1: Gồm những virus gây thiệt hại đáng kể, phân bố tƣơng đối 
rộng trên thế giới. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  8 
Bảng 1.1. Một số virus khoai tây thuộc nhóm 1 
Loài Chi 
Năm đầu 
tiên đƣợc 
nói đến 
Thiệt hại về 
kinh tế 
Phân bố 
Potato virus Y (PVY) Potyvirus 1931 Rất cao Rộng khắp 
Potato leafroll virus 
(PLRV) 
Polerovirus 1916 Rất cao Rộng khắp 
Potato virus X (PVX) Potexvirus 1931 Cao Rộng khắp 
Potato virus A (PVA) Potyvirus 1932 Vừa phải Rộng khắp 
Potato virus S (PVS) Carlavirus 1952 Vừa phải Rộng khắp 
Potato virus M (PVM) Carlavirus 1923 Vừa phải Rộng khắp 
Tobacco rattle Tobravirus 1946 Cao Rộng khắp 
Potato mop-top virus 
(PMTV) 
Pomovirus 1966 Khá cao Chủ yếu ở 
khí hậu lạnh 
+ Nhóm 2: Gồm những virus chỉ xuất hiện ở Châu Mỹ La Tinh, ít hay 
không gây thiệt hại về kinh tế. 
Bảng 1.2. Một số virus khoai tây thuộc nhóm 2 
Loài Chi 
Năm đầu 
tiên đƣợc 
nói đến 
Thiệt hại 
về kinh 
tế 
Phân bố 
Andean potato latent 
virus (APLV) 
Tymovirus 
1966 Rất thấp Bolivia, Colombia, 
Ecuador, Peru 
Andean potato mottle 
virus (APMoV) 
Comovirus 
1977 Chƣa biết Chili, Ecuador, 
Peru, Brazil 
Arracacha virus B-
oca strain (AVB-O) 
Nepovirus 
1981 Chƣa biết Bolivia, Peru 
Potato deforming 
mosaic virus (PDMV) 
Begomovirus 
1985 Cao ở 
một cây 
Bắc Brazil 
Potato rough dwart 
virus (PRDV) 
Carlavirus 1995 Rất thấp Argentina, 
Uruguay 
Potato virus T (PVT) Trichovirus 1977 Chƣa biết Bolivia, Peru 
Potato virus U (PVU) Nepovirus 1983 Không có Peru 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  9 
+ Nhóm 3: Gồm những virus xuất hiện ở những vùng khác nhau trên thế 
giới, mức độ thiệt hại không đáng kể hay chỉ cục bộ. 
Bảng 1.3. Một số virus khoai tây thuộc nhóm 3 
Loài Chi 
Năm đầu 
tiên đƣợc 
nói đến 
Thiệt hại 
về kinh tế 
Phân bố 
Alfalfa mosaic 
virus (AMV) 
Alfamovirus 
1940 Chỉ cục bộ Hiếm thấy 
Eggplant mottled 
Dwarf virus 
(EMDV) 
Nucleorhabdovirus 
1987 
Rất thấp Iran 
Potato aucuba 
Mosaic Virus 
(PAMV) 
Potexvirus 
1961 
Thấp Hiếm thấy 
Potato latent virus 
(PotLV) 
Carlavirus 
1996 
Chƣa biết Bắc Mỹ 
Potato virus V 
(PVV) 
Potyvirus 
1986 
Thấp 
Bolivia, Peru, 
Bắc châu Âu 
1.2.2. Đặc điểm chính của bệnh virus trên khoai tây 
1.2.2.1. Triệu chứng và thiệt hại 
Virus gây ra các triệu chứng chủ yếu là: khảm, đốm hay sự đổi màu, bộ 
lá bị quăn cuộn hay méo mó, sự rụng lá, còi cọc hay biến dạng của cây (Vũ 
Triệu Mân, 2007) [7]. Các kiểu chết hoại khác nhau có thể xuất hiện trên lá, 
thân và củ có thể ở cả trong và ngoài. Kích thƣớc, số lƣợng, diện mạo và chất 
lƣợng của củ có thể bị ảnh hƣởng (Kerlan, 2008) [40]. Theo Vũ Triệu Mân, ở 
Việt Nam, các bệnh virus ảnh hƣởng lớn tới năng suất củ khoai tây. Trọng 
lƣợng củ trên khóm giảm, tỉ lệ củ lớn thấp hoặc không có, tỉ lệ củ nhỏ tăng 
cao. Nhiều củ không sử dụng để làm lƣơng thực hay thực phẩm đƣợc mà phải 
dùng làm thức ăn gia súc hay loại bỏ. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  10 
Thiệt hại do bệnh virus khoai tây gây ra đƣợc chú ý nhiều hơn ở ngoài 
cánh đồng, nhƣng thực ra ngay ở trong kho bảo quản bệnh cũng gây ra thiệt 
hại. Một số điều tra cho thấy, củ khoai tây thuộc giống Ackersegen bị nhiễm 
virus Y, X, S, M và virus cuốn lá (PLRV) khi đƣa vào bảo quản đều tăng 
lƣợng củ thối và giảm khả năng nảy mầm (Vũ Triệu Mân, 1986) [6]. 
Bảng 1.4. Ảnh hƣởng của bệnh virus đến củ khoai tây 
(tính bình quân 20 khóm mỗi loại hình bệnh). 
(Theo Vũ Triệu Mân, 1973 -1977) 
Chỉ tiêu theo 
dõi 
Loại hình khóm bệnh 
Khóm khoẻ 
Xoăn lùn Cuốn lá Khảm lá 
Trọng lƣợng 
củ (g/khóm) 
30,0 225,0 240,0 295,0 
Tỉ lệ % củ lớn 
(%) 
0,0 9,2 7,7 10,4 
Tỉ lệ % củ 
trung bình(%) 
38,0 42,4 56,3 55,8 
Tỉ lệ củ 
nhỏ(%) 
62,0 48,4 36,0 30,8 
Tác hại của bệnh virus phụ thuộc vào nhiều yếu tố: điều kiện sống (khí 
hậu, thổ nhƣỡng, biện pháp chăm sóc), cây trồng có khả năng chống chịu khác 
nhau và loại, chủng virus gây bệnh. Có những vùng ở Tây Âu, virus cuốn lá 
làm giảm tới 90% sản lƣợng dự thu khi bệnh nặng. Trong khi đó, thiệt hại ở 
Đông Âu phần lớn lại do virus Y gây ra. Ở Việt Nam, virus cuốn lá gây hại 
nhẹ, nhƣng virus Y lại gây hại nặng. Nhìn chung, nơi có khí hậu ẩm và lạnh 
năng suất khoai tây giảm ít hơn so với nơi có khí hậu nóng và khô khi bị bệnh 
virus. Giống khoai tây kháng virus gồm nhiều loại: kháng cao, kháng trung 
bình, chịu bệnh. Virus có thể có trong giống chịu bệnh nhƣng cây không có 
triệu chứng, mặc dù chúng có thể là nguồn lây nhiễm cho những cây khác. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  11 
Ngƣời ta thấy cả khi ngoại cảnh rất phù hợp cho bệnh phát triển, nhƣng năng 
suất và phẩm chất củ bị ảnh hƣởng rất ít. Nhiều tác giả nhận thấy các cây ở 
các dòng lai có thể chống virus Y, X, S, M và virus cuốn lá 
Ở cây khoai tây có một hiện tƣợng đáng chú ý là sự xâm nhiễm hỗn hợp 
của nhiều virus trên một cây bệnh. Trong trƣờng hợp này, cây bệnh thƣờng có 
hiện tƣợng thoái hoá rất nặng và thiệt hại về năng suất rất nghiêm trọng (Vũ 
Triệu Mân, 1986) [6]. 
Sự nhiễm virus và một số bệnh hại khác ở khoai tây có mối quan hệ với 
nhau và cần xem sự nhiễm virus nhƣ một chỉ tiêu đánh giá sự nhiễm bệnh 
nấm của cây khoai tây. Bệnh thối trong kho do nấm Fusarium sẽ tăng lên gấp 
5 lần khi củ khoai tây bị nhiễm virus X và tăng gấp 6 lần khi củ khoai tây bị 
nhiễm nhiều virus cùng lúc (X, S, M) (Vũ Triệu Mân, 1986) [6]. 
1.2.2.2. Lan truyền của virus khoai tây 
Các virus khoai tây đƣợc truyền có hiệu quả bởi rệp. Rệp có thể định cƣ 
ở khoai tây hay di cƣ từ cây trồng, cỏ dại khác. Potato leafroll virus (PLVR) 
và potato virus Y (PVY) là những virus điển hình cho việc nghiên cứu cơ chế 
của sự truyền virus qua rệp theo cách bền vững và không bền vững (persistent 
and nonpersistent) (Vũ Triệu Mân, 2007) [8]. Nhiều virus ít gây thiệt hại đƣợc 
truyền qua các côn trùng khác, đáng chú ý là rầy xanh đuôi đen, bộ trĩ, ruồi 
trắng. Potato virus X (PVX) và một số chủng của potato virus S (PVS) đƣợc 
truyền bởi sự tiếp xúc giữa bộ lá, các mầm, giữa các củ khi cắt và cũng thông 
qua các dụng cụ nông nghiệp. Một số virus sinh sản trong đất trồng đƣợc truyền 
bởi giun tròn (tabacco rattle virus) hoặc nấm (potato mop-top virus, tobacco 
nerosis virus). Nhiều loài virus Andean có thể truyền bởi hạt (true potato seeds) 
và phấn hoa. Trong hầu hết các trƣờng hợp thì nguồn lây nhiễm là bản thân cây 
khoai tây (Kerlan, 2008) [40]. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  12 
1.2.2.3. Phƣơng pháp phòng chống bệnh virus khoai tây 
* Quản lí khoai tây giống 
Mục đích của công việc này là phân loại chất lƣợng về phạm trù thƣơng 
mại của khoai tây giống. Tiêu chuẩn này phụ thuộc vào từng nƣớc, tuy nhiên 
mức độ nhiễm không nên quá 10% với tất cả các virus (Kerlan, 2008) [40]. 
Quá trình sản xuất khoai tây giống đảm bảo chất lƣợng gồm các bƣớc 
chính sau: 
+ Nhân giống trong điều kiện mức độ nhiễm virus rất thấp. Ví dụ nhƣ 
trong ống nghiệm, hay trong nhà kính, ống nhựa ngăn chặn đƣợc vector hay 
trong những cánh đồng cô lập ở vùng mà khả năng nhiễm virus thấp. 
+ Kiểm tra cánh đồng bao gồm: 
- Tỉa cây bị bệnh 
- Diệt tất cả các nguồn lây nhiễm 
- Có biện pháp xử lí chống lại các vector (sinh vật trung gian 
truyền bệnh), đặc biệt là các côn trùng 
+ Sử dụng kĩ thuật trồng đặc biệt tính đến ngăn chặn các vector nhƣ tỉa 
cành khoai tây, trồng cây hàng rào. 
+ Quản lí vụ thu hoạch: Kiểm tra ở phòng thí nghiệm trên diện rộng, 
thông thƣờng sử dụng ELISA, đôi khi là các kĩ thuật phân tử. 
* Nhân giống kháng virus 
Có 3 kiểu kháng virus là: Resistance to infection hay field resistance; 
hypersensitivity resistance (HR); extrem resistance (ER). 
Resistance to infection đƣợc di truyền đa gen, đƣợc xác định bởi số củ 
con cháu bị nhiễm. Nó bao gồm cả sự kháng với virus lẫn với tác nhân truyền 
bệnh. Mức độ kháng phụ thuộc mạnh vào điều kiện môi trƣờng, thời gian 
nhiễm, chất tiêm nhiễm và vector. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  13 
HRvà ER đƣợc quy định bởi các gen trội đơn lần lƣợt N và R. ER là 
một dạng tăng cƣờng của HR (ER is an enhanced form of HR), kết quả là 
triệu chứng không rõ ràng và không có sự nhiễm vào cơ thể. Ngƣợc lại, HR 
gây ra những tổn thƣơng chết hoại cục bộ trên các lá đƣợc tiêm và trong hầu 
hết các trƣờng hợp sự chết hoại này mở rộng tới lá thấp hay cao hơn, tới thân 
và củ. Mặc dù virus phân bố không đều nhƣng có thể đƣợc phát hiện trong tất 
cả các cơ quan. 
Hình 1.1. Các gen kháng (màu xanh) với 4 virus chủ yếu 
(PVY, PLRV, PVX, PVA) ở khoai tây. 
(Theo: S. Marchadour, FNPPPT-INRA, Pháp) 
Các chƣơng trình nhân giống khoai tây resistance to infection của các 
virus chính đã đƣợc tiến hành từ lâu ở nhiều nƣớc trồng khoai tây. ER cũng 
đƣợc khai thác cao, đặc biệt là ở các nƣớc mà quy định về khoai tây giống 
đảm bảo chất lƣợng không đƣợc quản lí thoả đáng. Khả năng bảo vệ chống lại 
một số virus chính (PVX, PVY, PVA, PVM) quy định bởi gen R đã đƣợc tìm 
thấy trong một số loài họ cà dại nhƣ: S. stolonniferum, S. andigena, S. 
chacoense, S. acaule. Những loài này đƣợc sử dụng trong các chƣơng trình 
nhân giống ngay từ giữa những năm 1940. Gen N có mặt trong nhóm khoai 
tây cổ bởi vậy nó sát nhập dễ dàng vào cây khoai tây mới. Ngoài ra, khoai tây 
dễ biến đổi bởi các kĩ thuật di truyền. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  14 
Bên cạnh đó, sự kháng bắt nguồn từ mầm bệnh chống lại một số virus 
chính (PVY, PVX, PMTV) đã đƣợc nghiên cứu tỉ mỉ (Kerlan, 2008) [40]. 
* Biện pháp kiểm dịch 
Các biện pháp kiểm dịch nhằm ngăn chặn nguy cơ xâm nhập của các 
virus lạ từ một quốc gia hay một lục địa khác. Cho đến bây giờ, chƣa có một 
loại virus hay chủng nào trong danh sách kiểm dịch truyền ra ngoài vùng khởi 
đầu của nó. Các kĩ thuật cần thiết cho việc kiểm tra các vật liệu xuất nhập 
khẩu (củ, cành, hạt, phấn hoa, cây non trong ống nghiệm) đã đƣợc thiết lập. 
Các virus đƣợc chuẩn đoán bởi các thí nghiệm sinh học trên cây chỉ thị đƣợc 
chọn lựa, phần lớn kiểm tra bởi ELISA. Các kĩ thuật sinh học phân tử và kính 
kiển vi điện tử cũng có thể đƣợc sử dụng (Kerlan, 2008) [40]. 
1.3. POTATO VIRUS Y 
1.3.1. Phân loại 
Potato virus Y (PVY) thuộc chi potyvirus và họ potyviridae. Đây đƣợc 
xem là một họ lớn nhất và gây thiệt hại nghiêm trọng về kinh tế nhất của virus 
thực vật (Dimitre và cs, 2004) [28], (Tetsuji Ogawa và cs, 2008) [66]. 
1.3.2. Cây chủ 
Phạm vi cây chủ tự nhiên của PVY gồm những cây thuộc 9 họ. Có thể 
kể đến các cây sau: Khoai tây (S. tuberosum ssp.tuberosum); một vài loài 
khoai tây địa phƣơng ở Andes nhƣ A. andigena; nhiều cây dại họ cà; hồ tiêu 
(Capsicum spp.); thuốc lá (Nicotiana spp.); cà chua (Lycopersicon spp.); cà 
tím (S. melongena); các cây cảnh (Petunia spp., Dahlia spp.); các cây lâu năm 
(Physalis virginiana, P. heterophyla); một số cây hàng năm hoặc cây tự nhân 
giống lâu năm. Nhiều cây ở những vùng riêng biệt cũng là cây chủ của PVY 
nhƣ Cotula australis ở New Zealand hoặc Sorbaria tomentosa ở Himalaya. 
Cỏ dại thuộc họ cà thƣờng là nguồn lây nhiễm PVY cho cà chua, hồ 
tiêu. Chúng gồm: 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  15 
+ S. nigrum và S. dulcamara ở nhiều quốc gia 
+ S. chacoense và P. viscosa ở nam Mỹ 
+ S. Florida, P. gracile, S. aculeatissimum, P. angulata, P. ciliosa và P. 
floridana ở Floria 
+ P. virginiana và P. heterophyla là những cây chủ qua đông ở bắc Mỹ, 
S. dulcamara ở phía tây châu Âu hoặc Datura spp. ở các nƣớc địa trung hải là 
nguồn lây nhiễm PVY cho khoai tây trồng cũng nhƣ khoai tây mọc tự nhiên. 
Với thuốc lá ở USA, Canada, Italy, những cây cà chua, hồ tiêu, khoai tây 
nhiễm virus đƣợc xem là nguồn lây nhiễm (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
Khoảng 495 loài cây chủ thuộc 72 chi, 31 họ đƣợc sử dụng để làm các 
thí nghiệm. Chúng gồm 287 loài thuộc họ Solanaceae; 28 loài thuộc họ 
Amaranthaceae; 25 loài thuộc họ Fabaceae ; 20 loài thuộc họ Chenopodiaceae 
và 11 loài thuộc họ Asteraceae. Phần lớn những cây này là những cây chủ tổn 
thƣơng cục bộ. Từ những năm 1980-1990, Datura stramonium đƣợc chứng 
minh là miễn dịch hoàn toàn với tất cả các chủng. Một số PVY có thể nhiễm 
vào cây mô hình Arabidopsis thaliana (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
N. tabacum , N. benthamiana, N. occidentalis nhạy cảm với tất cả các 
chủng PVY và có thể sử dụng nhƣ các loài chuẩn đoán. Các cây non N. 
tabacum thƣờng đƣợc sử dụng trong các thí nghiệm truyền virus qua rệp. Đây 
cũng là cây chủ thích hợp cho nhân virus. Lƣợng virus thu đƣợc dao động từ 
10 đến 25mg (có khi lên tới 40mg) trên 1kg lá thuốc lá . Ngoài ra, lá của cây 
này là vật liệu nhiễm virus tốt nhất cho việc tích trữ (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  16 
Hình 1.2. Những đốm (mottle) điển hình trên cây thuốc lá N. tabacum 
cv Xanthi gây ra bởi PVY khoai tây sau 15 ngày tiêm. 
(Theo: C. Lacroix, IVRA, Pháp) 
1.3.3. Hình dạng và cấu trúc phân tử 
Virion PVY không có vỏ bao, dạng sợi nhỏ, cong queo, dài 730-740nm, 
đƣờng kính 11-12nm. Nó có một ống trục với đƣờng kính 2-3 nm, và cơ thể 
đối xứng xoắn ốc. Quá trình lắp ráp các bộ phận và phá vỡ hạt PVY đƣợc 
nghiên cứu tỉ mỉ. 
Hình 1.3. Hình dạng của PVY 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  17 
Virion chứa khoảng 6% axit nucleic. Genome của PVY là phân tử RNA 
dạng thẳng, sợi đơn, chiều dƣơng, có poly A ở đầu 3‟ và liên kết với protein 
(VPg) ở đầu 5‟ nhƣng không có lipid cũng nhƣ các thành phần khác. RNA của 
PVY khối lƣợng khoảng 3,1-3,2kDa, dài chừng 9,7kb, trừ đuôi poly A. Trình 
tự về toàn bộ hệ gen của PVY ở khoai tây, thuốc lá, hồ tiêu, cà chua, cà đen 
đã đƣợc công bố (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
Cũng nhƣ các potyvirus khác, bộ khung đọc mở của nó quy định một 
polypeptit lớn, khoảng 3061-3063 aa. Polypeptit lớn này đƣợc cắt thành 10 
protein chức năng: P1 (284aa); HC-Pro (456aa); P3 (365aa); 6K1(52aa); CI 
(634aa); 6K2 (52aa); VPg (188aa); NiaPro (244aa); Nib (521aa); CP (267aa). 
Có 2 vùng ngoại biên không dịch mã: 5‟ NTR (184aa); 3‟ NTR (326-333aa). 
Hình 1.4. Sơ đồ mô tả hệ gen của các chủng PVY0, PVYN 
và các biến thể PVYNTN , PVYNW 
(Đƣợc mô phỏng lại của Glais L,Tribodet M và Kerlan C (2002)) 
1.3.4. Quan hệ họ hàng với các potyvirus khác 
PVY có quan hệ xa về huyết thanh với potato virus A (PVA), potato 
virus V (PVV) và 17 virus khác thuộc chi potyvirus. PVY, pepper mottle virus 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  18 
(PepMoV), PVV, pepper yellow mosaic virus, pepper severe mosaic virus, 
wild potato mosaic virus và Peru tomato virus tạo thành một nhánh cây phát 
sinh phân biệt với các potyvirus khác kể cả PVA (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
1.3.5. Lan truyền của PVY 
Trong tự nhiên, PVY đƣợc truyền bởi rệp và các cơ quan sinh sản sinh 
dƣỡng của cây nhƣ củ hay cành. Với các cây thuốc lá và cà chua đƣợc trồng ở 
Bắc Mỹ, PVY đƣợc truyền thông qua sự tiếp xúc giữa cây với cây. Chúng 
cũng đƣợc truyền bởi sự tiếp xúc giữa các mầm củ khoai tây trong quá trình 
cất giữ. Ngoài ra, phƣơng thức truyền bởi hạt cũng đƣợc thông báo ở S. 
nigrum và Nicandra physaloides. Sự lan truyền bởi phấn hoa chƣa từng đƣợc 
xác định ở bất cứ cây chủ nào. 
Không giống với các potyvirus khác, PVY có phạm vi rệp truyền bệnh 
rất lớn. 70 loài rệp thuộc họ Aphidinae đều có thể truyền PVY. Trong đó, 
Mysus persicae là loại rệp có hiệu quả truyền PVY lớn nhất. Ở khoai tây, loài 
này cùng những loài định cƣ ở khoai tây trong thời gian dài trên cánh đồng là 
tác nhân truyền virus chủ yếu. Tuy vậy, những loài di cƣ từ những cánh đồng 
khác cũng có vai trò đáng kể trong việc truyền PVY. Rệp ngũ cốc, rệp đậu hà 
lan đƣợc cho là liên quan tới dịch bệnh xảy ra trên cánh đồng khoai tây ở 
Châu Âu, Bắc Mỹ (Kerlan và cs, 2008) [41]. PVY có phạm vi cây chủ rộng 
nhƣng cho tới tận bây giờ, ngoài khoai tây chƣa có cây chủ nào đƣợc nhận 
định nhƣ là một nguồn lây nhiễm đáng kể. Cũng trên khoai tây, có sự khác 
nhau về hiệu quả truyền PVY giữa các chủng. PVYN có hiệu quả truyền qua 
rệp cao hơn các chủng khác do thời gian duy trì của chúng trong rệp dài hơn 
(Kerlan, 2008) [40]. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  19 
Hình 1.5. Loài rệp có cánh truyền PVY (Aphis nasturtii) 
(Theo: B. Chaubet, INRA, Pháp) 
Rệp truyền PVY theo cách không bền vững (nonpersistent manner). 
Giai đoạn thu nhận đƣợc và tiêm rất ngắn (vài giây hay vài phút). Vòi của rệp 
xuyên vào bên trong lớp tế bào biểu bì của cây và đâm thủng màng tế bào 
chất. Virus đƣợc giữ trong rệp không quá 1 đến 2 giờ. Tuy vậy, ở Aphis 
nasturtii, thời gian giữ có thể lên tới trên 17 giờ. Thời kì đói của rệp làm tăng 
hiệu quả của việc truyền virus mặc dù nó không ảnh hƣởng tới số lƣợng các lỗ 
trích trong suốt thời kì thu nhận đƣợc (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
Tính chất có thể lan truyền của PVY đƣợc quyết định bởi cả hai protein 
là coat protein (CP) và helper component protein (HC-Pro). Tất cả PVY có 
thể đƣợc truyền bởi rệp đều chứa bộ ba aa: DAG (Asp-Ala-Gly) trong vùng 
tận cùng đầu N của CP. Khác với tobacco vein mottling virus, các virus trình 
tự DAGE cũng có thể đƣợc truyền bởi rệp. PVY là virus đầu tiên đƣợc chứng 
minh rằng một thành phần của nó trong nhựa cây cần thiết cho sự vận chuyển 
của rệp. Sự làm mất hoạt tính của HC- Pro liên quan tới việc không giữ đƣợc 
virion trên vòi rệp. Các virus đƣợc vận chuyển bởi rệp và không đƣợc vận 
chuyển bởi rệp khác nhau ở một hoặc 2 sự thay thế axit amin: Gly35 cho Asp, 
Lys
50
 cho Glu hoặc Lys50 cho Asn, Ile225 cho Val, Ser355 cho Gly. Lys50 là một 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  20 
phần của “LITC motif” có tính bảo thủ (Lys–Ile–Thr–Cys). Thay đổi bên 
trong hay xung quanh motif này có thể làm mất tính chất có thể truyền bởi rệp 
của PVY. 
1.3.6. Một số đặc điểm của PVY trên khoai tây 
1.3.6.1. Thiệt hại PVY gây ra trên khoai tây 
Ở khoai tây, hiện nay PVY đã trở thành virus nghiêm trọng nhất, gây 
thiệt hại lớn về kinh tế. Nó ảnh hƣởng tới hầu hết các cây và gây thiệt hại về 
sản lƣợng tới 80%, thậm chí còn lớn hơn trong trƣờng hợp bệnh đốm chết 
hoại củ khoai tây (PTNRD). Kết quả nghiên cứu những năm trƣớc, Weideman 
(1979) cho biết, ở Đức khi bị PVY nặng, khoai tây có thể giảm tới gần 60% 
năng suất dự thu. 
Thiệt hại do PVY gây ra trên khoai tây phụ thuộc vào nhiều yếu tố, 
trong đó hai yếu tố quan trọng nhất là giống khoai tây và chủng virus. 
1.3.6.2. Các chủng và các biến thể của PVY khoai tây 
PVY khoai tây đƣợc chia thành 3 chủng (PVYO, PVYN và PVYC), 
nhiều biến thể. PVYO, PVYN và PVYC đƣợc phân biệt dựa trên các phản ứng 
của chúng trên cây thuốc lá Nicotiana tabacum và trên khoai tây trồng mang 
các „hypersensitivity gene’ Nytbr và Nc (Kerlan, 2008) [40]. PVY
N
 khác với 
PVY
O
 và PVY
C
 trong việc gây ra phản ứng chết hoại gân lá của N. tabacum 
cv Samsun hoặc cv Xanthi. 2aa ở vị trí 400 và 419 trong protein HC- Pro liên 
quan tới sự cảm ứng phản ứng chết hoại này ở cây thuốc lá. Ngoài ra, các 
chủng PVY còn đƣợc phân biệt bởi phản ứng trên cây chủ P. floridance. 
PVY
C
 gây ra sự suy sụp và chết sớm ở loại cây này (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
Các biến thể PVYNTN, PVYNW và PVYN:O cũng khá phổ biến. PVYNW, 
PVY
N:O
 và phần lớn PVYNTN là sự tái tổ hợp giữa chủng PVYO và PVYN với 
từ một đến ba điểm tái tổ hợp. PVYNTN đặc trƣng bởi sự gây ra chết hoại củ 
trên khoai tây. Việc phát hiện ra PVYNTN không có điểm tái tổ hợp đã chỉ ra 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  21 
rằng cấu trúc tái tổ hợp của genome không phải là điều kiện quyết định cần 
thiết cho kiểu hình chết hoại củ. PVYN W phân biệt với PVYN ở tính chất gây 
độc và kiểu huyết thanh là O-C. PVYN:O đƣợc mô tả trong những năm 2000 
cũng mang một phần thuộc tính của PVYN và PVYO. Một số PVYN:O gây ra 
sự chết hoại củ (Kerlan, 2008) [40], (Kerlan và cs, 2008) [41], (Tetsuji 
Ogawa, 2008) [66]. 
Các chủng PVYO và PVYN phân bố rộng khắp, nhƣng đến nay, PVYN 
vẫn chƣa thuộc danh sách mầm bệnh kiểm dịch ở Canada và USA. Chủng 
PVY
C 
 ít gặp hơn (ở Pháp PVYC chiếm ít hơn 5% PVY). Biến thể PVYNTN 
đƣợc tìm thấy trong hầu hết các nƣớc trồng khoai tây kể cả USA và Peru. Còn 
biến thể PVYNW đƣợc thông báo ở một vài quốc gia và phổ biến ở Poland. Ở 
Canada và USA cùng thông báo sự xuất hiện của PVYN:O. 
Hình 1.6. Dấu hiệu so sánh PVY trên Nicotiana tabacum cv Xanthi 
(sau 15 ngày tiêm): (a) Thuốc lá nhiễm PVYN; (b) Thuốc lá nhiễm PVYO 
1.3.6.3. Triệu chứng của bệnh do PVY trên khoai tây 
Ba chủng (PVYO, PVYN, PVYC) gây ra các triệu chứng khác nhau ở cây 
khoai tây: 
+ PVY
O: Khi lây nhiễm lần đầu (primer), phản ứng của cây với chủng 
virus này phụ thuộc vào giống khoai tây. Lá cây có thể chết hoại, tạo đốm hay 
ngả vàng, lá rũ xuống, đôi khi cây non bị chết. Lúc đầu các lá non xuất hiện 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  22 
vết đốm hay vết hình khuyên, sau đó chết và treo trên thân, lá cây giòn (Vũ 
Triệu Mân, 1986) [6]. Khi nhiễm lần hai (secondery), triệu chứng điển hình là 
khảm, quăn, đốm chết hoại của lá và sự còi cọc của cây. 
+ PVY
N
 gây ra các triệu chứng nhẹ hơn, thƣờng là khảm, đốm trên lá. 
Đôi khi những vết đốm không rõ ở lần nhiễm đầu tiên. Khi bệnh nhiễm vào 
cây chậm, triệu chứng ở tán lá có thể không biểu hiện, nhƣng củ thu hoạch ở 
nhóm cây nhiễm chậm vẫn có thể mang bệnh (Vũ Triệu Mân, 1986) [6]. 
+ PVY
C gây ra các sọc chấm trên thân và những đốm nâu xung quanh 
các mắt củ. 
Bệnh đốm chết hoại củ khoai tây (PTNRD) do PVYNTN và một số 
PVY
N
W, PVY
N:O
 đƣợc đặc trƣng bởi những kiểu đặc biệt trên lá và thân (đôi 
khi là chết hoại lá sồi) sự chết hoại hình vòng và cong trên bề mặt củ. Đầu 
tiên, nó nhô ra không đáng kể trên vỏ củ, rồi trở nên nâu đen cùng một số vết 
rạn nứt (Kerlan và cs, 2008) [41]. 
Hình 1.7. Triệu chứng nhiễm lần hai (secondary) với PVY 
trên cánh đồng khoai tây: quăn, vàng và nhỏ của lá 
(Theo: V. Le Hingrat, FNPPPT, Pháp) 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  23 
Hình 1.8. Triệu chứng của bệnh đốm chết hoại củ khoai tây (PTNRD): 
(a)Vàng và chết hoại trên lá cơ bản; (b) Kiểu chết hoại lá sồi trên lá trung gian; (c) Triệu 
chứng điển hình của PTNRD trên củ ở cv Monalisa; (d) Triệu chứng không điển hình gây 
ra bởi PVYO trên củ ở cv Yukon Gold. 
(Theo: K. Charlet-Ramage, GNIS-INRA, France (a–c) và 
 R. P. Singh Potato Research Centre, NB, Canada (d)) 
1.3.6.4. Biện pháp phòng chống bệnh do PVY gây ra trên khoai tây 
Các bệnh do PVY gây ra trên khoai tây đƣợc phòng chống dựa trên các 
biện pháp quản lí khoai tây giống, gây giống kháng bệnh và các quy định về 
kiểm dịch, đặc biệt là đối với PVYN. Sự sản xuất khoai tây giống an toàn gồm: 
kiểm tra rệp truyền bệnh, xử lí dầu vô cơ chống lại sự truyền của rệp, trừ cỏ 
dại, kiểm tra phát hiện virus trong vụ thu hoạch chính bằng sử dụng ELISA 
trên phạm vi rộng. Nhiều các thí nghiệm sinh học phân tử cũng đƣợc phát 
triển để phát hiện PVY trong lá, củ và rệp nhƣ lai cDNA (cDNA 
hybridization), các RT-PCR khác nhau, kĩ thuật microarray. HR và ER lần 
lƣợt do các gen trội đơn Ny và Ry quy định. Gen Ry (Rysto, Ryadg) ở loài họ cà 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  24 
dại, nằm trên nhiễm sắc thể XI và XII, quy định khả năng kháng rộng. Ngƣợc 
lại, gen Nc, Nytbr nằm trên nhiễm sắc thể thứ IV và Nz lần lƣợt quy định khả 
năng kháng PVYC, PVYO và PVYZ. Protein NiaPro của PVY liên quan tới 
việc hoạt động của Ry. Đã tạo đƣợc hơn 20 loại cây trồng chứa Ry đem lại 
khả năng kháng virus khá bền (Kerlan và cs, 2008) [41]. Ngoài ra, hƣớng 
nghiên cứu sử dụng vật liệu di truyền có nguồn gốc từ virus để tạo cây chuyển 
gen kháng virus đang đƣợc nhiều tác giả quan tâm. 
Hình 1.9. Vị trí các gen kháng PVY trên genom khoai tây 
(Theo: S. Marchadour, FNPPPT-INRA, Pháp) 
1.4. TÌNH HÌNH NGHIÊN CỨU PVY TRÊN THẾ GIỚI VÀ VIỆT NAM 
1.4.1. Tình hình nghiên cứu PVY trên thế giới 
Năm 1931, Smith lần đầu tiên phát hiện ra PVY trên khoai tây. Từ đó 
đến nay, hàng loạt các công trình nghiên cứu về virus này đã đƣợc công bố. 
Các chủng và các biến thể PVY đƣợc phát hiện, nghiên cứu tỉ mỉ, thiệt hại của 
bệnh, các phƣơng pháp chuẩn đoán cũng nhƣ các biện pháp phòng chống 
PVY đƣợc đƣa ra. 
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu – Đại học Thái Nguyên  25 
Việc chẩn đoán các chủng PVY đầu tiên dựa vào các thí nghiệm sinh 
học. Các chủng khác nhau biểu hiện các triệu chứng khác nhau trên cây chỉ 
thị. Tuy vậy, phƣơng pháp này tốn nhiều thời gian, nhiều khâu phức tạp, 
không phù hợp với chuẩn đoán nhanh trên quy mô lớn. Vì vậy, nhiều nhóm 
nghiên cứu ở các phòng thí nghiệm quốc tế đã cố gắng phát triển các phƣơng 
pháp khác để phát hiện, mô tả PVY dựa trên các đặc điểm sinh học, huyết 
thanh và phân tử của PVY. 
 Từ cuối những năm 1970, những hiểu biết về thuộc tính gây miễn 
dịch của PVY đã đƣợc sử dụng trong việc nhận dạng virus. Dựa trên phản ứng 
kháng nguyên-kháng thể này, nhiều phƣơng pháp chuẩn đoán lần lƣợt đƣợc 
công bố nhƣ: DAS-ELISA hoặc TAS-ELISA (double-or triple-antib
            Các file đính kèm theo tài liệu này:
 Nghiên cứu tính đa dạng của virus Y trên khoai tây trồng tại Thái Nguyên.pdf Nghiên cứu tính đa dạng của virus Y trên khoai tây trồng tại Thái Nguyên.pdf