Luận án Nghiên cứu thành phần hóa học và hoạt tính sinh học loài bời lời nhớt litsea glutinosa (lour.) c.b. rob. họ long não (lauraceae) và loài nhãn dê (lepisanthes rubiginosa (roxb.) leenh.) họ bồ hòn (sapindaceae) của Việt Nam

-3) cho thấy ph n đường glucopyranose gắn với carbon C-1 của aglycone (farnesol). Ngoài ra còn thấy tương t c giữa H-1 arn sol δH 4,32; dd; J = 11,5; 6,5 Hz) với C1-glc δc 101,17), C-2, C-3- arn sol δc 121,05) và 142,62. Một phân tử rhamnopyranos được gắn với C-6 của glucopyranos , điều này được chứng minh qua pic giao (cross peak) trong phổ HMBC giữa H1-Rham I [δH 4,77(s)] với C6-glc δc 67,84), C-5-Rham I δc 69,79), C2-Rham I δc 72,17) cũng như 1-Rham I δc 102,19) với H6a-glc [δH 4,00) (d; J = 11,0 Hz) trong phổ HMBC →H) cũng như tương t c giữa H1-Rham I với H-2 Rham I δH 3,85 brs) trong phổ NOESY. Phân tử rhamnopyranose thứ 2 Rham II) được gắn với C2-glc thể 117 hiện qua tương tác H1-Rham II [δH 5,19 (s)] với C2-glc δc 79,81) và C2-Rham II δc 71,75); C3-Rham II δc 82,12). Phân tử α-L-arabinopyranose thứ nhất được gắn với phân tử Rham II ở vị trí C3-Rham II thông qua tương t c trong phổ HMBC H→ ) giữa H1-Ara I [δH 4,38 (d; J = 7,0 Hz)] với C3-Rham II δc 82,12) cũng như tương t c giữa C1-Ara I δc 105,46) với H3-Rham II [δH 3,73 (dd; J = 3,0; 9,5 Hz)], H2-[Ara I δH 3,62 (m)]; giữa C3-Rham II δc 82,12) với H1-Rham II δH 5,19), H1- Ara I δH 4,38), H2-Rham II δH 4,21 br. s); trong phổ HM →H) Phân tử α-L- arabinopyranose thứ hai Ara II) được gắn với nguyên tử C3-glc thông qua tương tác giữa H1-Ara II [δH 4,52 (d; J = 7,0; Hz)] với C3-glc δc 87,19) trong phổ HMBC H→ ) cũng như tương t c giữa C1-Ara II δc 106,29) với H2-Ara II [δH 3,67 (m)], H5-Ara II [δH 3,90 (brd; J = 12,5 Hz)] và giữa C3-glc δc 87,19) với H2-glc [δH 3,52 (t; J = 8,0 Hz)], H1-glc [δH 4,40 (d; J = 8,0 Hz)], H1-Ara II [δH 4,52 (d; J = 7,0 Hz)] trong phổ HM →H) Như vậy, cấu trúc của chất ND10 được xác định là 1-O-α-L- rhamnopyranosyl 1→6)-α-L-rhamnopyranosyl 1→2) [α-L-arabinopyranosyl 1→3)]-α-L-ara inopyranosyl 1→3)]-β-D-glucopyranosyl all-trans-farnes-1-ol. Đây là một chất mới, l n đ u ti n được phân lập từ thi n nhi n và được đặt tên là Lepisantheside C. Số liệu phổ NMR của chất ND10 và chất rubiginoside trong tài liệu [132] được đưa ở (Bảng 3.19). Hình 3.46: Một số tương t c ch nh trong phổ HM H→ ) của chất ND10 Bảng 3.19: Số liệu phổ 1H - NMR (500MHz) và 13C- NMR (125 MHz của chất ND10 và ND11 trong CD3OD V trí ND10 Rubiginoside [132] ND11 118 δc δH (J = Hz) δc δH (J = Hz) δc δH (J = Hz) 1 66,02 4,32 dd (11,5; 6,5; 4,23) 66,9 4,20 dd (7,0; 7,0) 4,30 dd (8,0; 8,0) 66,13 4,22 chồng lấp 4,33 dd (6,0; 11,5) 2 121,05 5,41 t (6,5) 121,9 5,38 t (7,0) 121,14 5,42 t (6,5) 3 142,62 143,5 142,49 4 40,67 2,10 t (7,5) 41,6 2,10 m 40,65 2,10 d (6,0) 5 27,36 2,13 m 28,2 2,15 m 27,40 2,17 t (7,0) 6 125,20 5,11-5,17 (trùng lặp) 126.0 5,05 t (7,0) 125,30 5,19 s 7 136,31 137,2 136,19 8 40,89 2,01 t (7,5) 41,8 2,00 m 40,65 2,10 d (6,0) 9 27,84 2,10 m 28,7 2,10 m 27,40 2,17 t (7,0) 10 125,42 5,11-5,17 m (trùng lặp) 126,3 5,09 t (7,0) 125,88 5,19 trùng lặp 11 132,17 133,0 34,53 1,61 m 12 25,94 1,69 s 26,9 1,67 s 111,53 4,93 s; ≈ 4,80 trùng dung môi 13 17,82 1,62 s 18,7 1,60 s 18,05 1,73 s 14 16,1 1,64 17,1 1,61 s 16,24 1,73 s 15 16,60 1,73 17,5 1,71 s 16,64 1,63 s Glc 1‟ 101,17 4,40 d (8,0) 102,0 4,38 d; (8,0) 101,22 4,40 d (7,5) 2‟ 79,81 3,52 t (8,0) 80,6 3,45 dd (8,0; 8,0) 79,81 3,52 t (8,5) 3‟ 87,19 3,65 m 88,3 3,65 87,20 3,61 m 4‟ 70,04 3,40 m 70,7 3,40 70,08 3,40 m 5‟ 76,28 3,41-3,70 m 77,1 3,40 76,32 3,41-3,60 m 6‟ 67,84 3,63 m 4,00 d (11,0) 68,6 3,98 67,88 4,00 d (10,5) 3,65 m 119 RhamI 1‟‟ 102,19 4,77 brs 103,0 4,75 brs 102,22 4,77 s 2‟‟ 72,17 3,85 brs 73,0 3,85 72,19 3,85 brs 3‟‟ 72,36 3,56 m 73,2 3,68 (dd; J = 9,0; 4,0) 72,39 3,60 m 4‟‟ 72,92 3,56-3,70 m 74,9 3,40 72,94 3,52-3,80 m 5‟‟ 69,79 3,67 m 70,6 3,68 69,81 3,66 m 6‟‟ 18,05 1,29; (d; J = 6,0) 19,0 1,27 (d; J = 6,0) 18,05 1,24 (d 6,0) RhamII 1‟‟‟ 102,62 5,19 s 103,8 5,15 s 102,61 5,19 s 2‟‟‟ 71,75 4,21 brs 72,9 3,98 71,75 4,21 brs 3‟‟‟ 82,12 3,73 dd (3,0; 9,5) 74,0 3,65 82,12 3,73 dd (3,0; 9,5) 4‟‟‟ 74,03 3,38 74,7 3,40 74,08 3,40 m 5‟‟‟ 69,79 4,07 dd (6,0; 9,5) 72,7 3,98 69,81 4,06 dd (6,0; 10,5) 6‟‟‟ 18,05 1,24 d (6,0) 18,9 1,21 d (6,0) 18,05 1,29 d (6,0) AraI 1‟‟‟‟ 105,46 4,38 d (7,0) 106,3 4,36 d (7,0) 105,45 4,38 d (8,5) 2‟‟‟‟ 72,17 3,62 m 74,3 3,65 72,39 3,60 m 3‟‟‟‟ 74,41 3,55 75,2 3,55 dd (9,0; 3,0) 74,43 3,56 4‟‟‟‟ 69,79 3,86 70,6 3,85 69,81 3,90 5‟‟‟‟ 67,60 3,64; 3,95 br, d (12,5) 68,6 3,65 67,60 3,62; 3,95 dd (2,0; 12,5) AraII 1‟‟‟‟‟ 106,29 4,52 d, (7,0) 106,25 4,52 d (7,0) 2‟‟‟‟‟ 72,36 3,67 m 72,39 3,65 m 3‟‟‟‟ 74,07 3,55 m 74,08 3,55 m 120 4‟‟‟‟‟ 69,68 3,83 m 69,67 3,82 m 5‟‟‟‟‟ 67,12 3,90 br, d (12,5) 3,61 m 67,11 3,89 br d (12,0) 3,62 m Hình 3.47: Phổ 1H-NMR giãn 1 của chất ND10- CD3OD 121 Hình 3.48: Phổ 1H-NMR giãn 2 của chất ND10- CD3OD Hình 3.49: Phổ 1H-NMR giãn 3 của chất ND10- CD3OD 122 Hình 3.50: Phổ 13C-NMR giãn 1 của chất ND10- CD3OD Hình 3.51: Phổ 13C-NMR giãn 2 của chất ND10- CD3OD 123 Hình 3.52: Phổ 13C-NMR giãn 3 của chất ND10- CD3OD Hình 3.53: Phổ HMBC giãn của chất ND10- CD3OD 124 Hình 3.54: Phổ COSY giãn của chất ND10- CD3OD  Hợp chất ND11: (chất mới): 1-O- α-L-rhamnopyranosyl 1→6)- α-L rhamnopyranosyl 1→2) [α-L-ara inopyranosyl 1→3)]- α-L-arabinopyranosyl 1→3)]- β-D-glucopyranosyl-all-trans-farnesol1,12-en-1-ol. Chất ND11 được tách ra ở dạng màu trắng vô định hình. Phổ khối ESI-MS ion ương của ND11 cho pic ion tại m/z 979; Phổ khối phân giải cao ion ương có pic ion tại m/z 979,41760 (tính toán lý thuyết cho công thức phân tử C43H72O22K là 979,41469) Như vậy công thức của chất ND11 sẽ là C43H72O22 với khối lượng phân tử là 940 Như thế có thể dự đo n chất ND11 là một đồng phân của chất ND10. Khi xem xét phổ 1H và 13C-NMR (PL 29) có thể thấy rằng chất ND11 cũng chứa năm đơn vị monosaccharide. Thành ph n và vị trí kết nối giữa năm đơn vị đường với nhau và với ph n aglycone (phân tử arn sol) cũng hoàn toàn giống với chất ND10. Chất ND10 và ND11 cũng rất sát nhau khi quan sát trên sắc ký bản mỏng với thuốc thử vanilin/H2SO4 đặc và hơ nóng Sự khác nhau giữa ND10 và ND11 là ở vị trí liên kết đôi trong ph n aglycone (farnesol). Ngoài hai nhóm methyl của hai phân tử đường α-L-rhamnopyranose tại δH 1,24 và 1,29 (mỗi tín hiệu gồm 3H; d; J = 6,0 Hz) thì phổ 1H-NMR của ND11 chứa 125 t hơn ND10 một nhóm methyl, c thể tại δH 1,65ppm (3H; s); 1,73 ppm (6H; s). Thay vào nhóm methyl thứ tư th chất ND11 có nhóm methylene (=CH2) tại δH 4,93 s), ≈ 4,80 trùng với dung môi CD3OD, và δc 111,53 Đồng thời chất ND11 còn có nhiều hơn ND10 một nhóm methylen alkan thể hiện tại δc 34,53; δH 1,61 (m). Các thông tin này gợi ý rằng, nhóm isopropyl -CH(CH3)2 [C-11; C-12; C13] trong chất ND10 đã chuyển thành nhóm isopropylen –C(CH3)=CH2 ở chất ND11. Tín hiệu của carbon C-11 cũng được chuyển dịch về ph a trường thấp hơn tại δc 148,85 Điều này được chứng minh thêm qua phổ HM H→ ) cũng như →H) của ND11. Trên phổ HMBC của ND11 thấy có tương t c giữa H-13 δH 1,73) với C- 12 δc 111,53), C-11 δc 148,53) (Hình 69). Từ các số liệu trên có thể kết luận rằng, cấu trúc của chất ND11 là 1-O- α-L-rhamnopyranosyl 1→6)- α-L rhamnopyranosyl 1→2) [α-L-ara inopyranosyl 1→3)]- α-L-arabinopyranosyl 1→3) - β-D-glucopyranosyl all-trans-farnes-2,6,11 (12)-en-1-ol Đây là một chất mới và được đặt tên là Lepisantheside D. Số liệu phổ NMR của chất ND11 được đưa ở (Bảng 3.19). Hình 3.55: Một số tương t c ch nh trong phổ HM H→ ) của chất ND11 126 Hình 3.56: Phổ DEPT giãn của chất ND11- CD3OD Hình 3.57: Phổ HMBC giãn của chất ND11- CD3OD 127 Bảng 3.20: Tổng hợp các chất phân lập từ hai cây nghiên cứu Cây Bời lời Thái Nguyên Cây Bời lời Thừa Thiên Huế BL15 (Cis-5,8,11,14,17-eicosapentaenoic acid methyl ester) BL01 (Nicotiflorin) BL16 (Spatozoate) BL02 (Rutin) BL17 β-sitosterol) BL03 (Afzelin) BL18 (Daucosterol) BL04 (Quercitrin) 128 BL19 (1-heptadecanol)  BL05 (Magnocurarine chloride) BL20 (1-eicosanol)  BL06 (Oblongine chloride) BL21 (Glycerol 1,3-di(9Z,12Z- octadecadienoat)-2-hexadecanoate) BL07 (Boldine methochloride) BL08 (Pallidine) 129 BL09 (Predicentrine) BL09 (Predicentrine) BL10 (Criptorodine) BL10 (Criptorodine)  BL11 (Reticuline)  BL11 (Reticuline) BL12 (Aripuanin) 130 BL13 (Blumenol A) BL14 (2-phyten-1-ol) Các chất phân lập từ loài Nhãn dê (Lepisanthes rubiginosa (Roxb.) Leenh.) ND1 (Lupeol) ND2 (Diosmetin; 5,7,3'-Tryhydroxy-4'-methoxyflavone) ND3 (Heptadecanoic acid; Magaric acid; Daturinic acid) ND4 R=H: β-sitostosterol) ND5 R= β-D-glucose; sitosterol-3-O-β-D- glucopyranoside) 131 ND6 (3-O-β-sophoroside) ND7 (3-O-[β-D-xylopyranosyl 1→3)- β-D-glucopyranosyl-]-oleanoic acid) ND8 (Lepisantheside A) ND9 (Lepisantheside B) 132 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGH Kết luận ● T ành phần hóa học của loài Bời lời nhớt [Litsea glutinosa (Lour.) Rob.] - Từ mẫu thu hái tại tỉnh Thừa Thiên – Huế: đã chiết t ch và x c định cấu trúc hóa học của 14 hợp chất trong đó có 7 al aloi hung aporphin, 4 flavonoid glycoside, hai megastigmane và một sterol. - Từ mẫu thu hái tại Th i Nguy n đã chiết t ch và x c định cấu trúc hóa học của 10 hợp chất trong đó có 03 al aloi hung aporphin 2 chất trùng với mẫu Thừa Thiên -Huế), số còn lại là các dẫn xuất của acid và alcol béo. - Có 15 chất từ hai mẫu này l n đ u ti n được phân lập từ loài Bời lời nhớt (Litsea glutinosa). ● Thành phần hóa học và ho t tính sinh học của loài Nhãn dê (Lepisanthes rubiginosa (Roxb.) Leenh.) - Đã chiết t ch và x c định cấu trúc hoa học của 11 hợp chất, trong đó có 04 chất mới là các glycoside của acid oleanoic [Lepisanthes A (ND8), Lepisanthes B (ND9)] và 02 chất là các pentaglycoside của farnesol [Lepisanthes C (ND10), Lepisanthes D (ND11)] và 9 chất l n đ u ti n được phân lập từ loài này. ● Về ho t tính sinh học - Đã thử hoạt tính hạ đường huyết tr n động vật thực nghiệm của dịch chiết EtOH 80% của mẫu Bời lời nhớt thu tại Thừa Thiên -Huế. Kết quả cho thấy: với liều 250 và 500mg dịch chiết /kg thể trọng chuột thì hoạt tính hạ đường huyết có ý nghĩa thống kê với nhóm đối chứng. Trong đó liều 500mg dịch chiết /kg thể trọng chuột hoạt t nh tương đương thuốc Acarbose liều 5mg/kg thể trọng. - Đã x c định được độc tính cấp của dịch chiết EtOH 80% của mẫu Bời lời nhớt Thừa Thiên- Huế với liều LD50 là 20g/kg thể trọng và thuộc loại không có độc. - Đã thử hoạt t nh gây độc tế ào ung thư, hoạt tính kháng oxy hóa và hoạt tính ức chế nzym α- glucosidase của 11 chất sạch t ch được. Một số chất có hoạt tính ở mức trung nh đến khá. Dịch chiết BuOH của loài Nhãn dê thể hiện hoạt tính ức chế tốt cả 4 dòng tế ào ung thư thư nghiệm là KB, HepG2, MCF-7 và Lu-1. Kiến ngh : ● Nghi n cứu sâu hơn về cơ chế hạ đường huyết của chế phẩm bằng cách 133 tiến hành thêm một số thí nghiệm sinh hóa đ nh gi t c động của dịch chiết cồn nước từ vỏ của loài Bời lời nhớt trên chuột thí nghiệm, tạo tiền đề ứng d ng sản phẩm của đề tài làm thuốc hạ đường huyết. ● Nghi n cứu hoạt t nh gây độc tế bào của các chất sạch phân lập từ loài Nhãn dê (Lepisanthes rubiginosa (Roxb.) Leenh). Những đóng góp mới của luận án. - Xác định được thành ph n hóa học và hoạt tính sinh học của loài Bời lời nhớt (Litsea glutinosa (Lour.) Rob.) thu hái tại Thái Nguyên và Thừa Thiên Huế cho thấy: + Mẫu thu hái tại Thừa Thiên Huế có thành ph n hóa học và hoạt tính sinh học đa ạng hơn so với mẫu thu hái tại Thái Nguyên - Trong 21 hợp chất phân lập được từ loài (Litsea glutinosa (Lour.) Rob.) có 15 hợp chất l n đ u ti n được phân lập từ loài nghiên cứu. - L n đ u tiên công bố về các hoạt t nh gây độc tế bào, hoạt tính chống oxi hóa và hoạt tính hạ đường huyết của các chất sạch phân lập từ loài Bời lời nhớt. - Trong 11 hợp chất phân lập được từ loài Nhãn dê (Lepisanthes rubiginosa (Roxb.) Leenh.) có 4 chất mới và 9 chất l n đ u ti n được phân lập từ loài này. L n đ u tiên công bố về hoạt t nh gây độc tế ào ung thư của cây Nhãn dê. 134 DANH MỤC CÁC CÔNG TRÌNH CÔNG BỐ L Ê QUA ĐẾN LUẬN ÁN 1. Pham Thi Ninh, Nguyen Thi Luu, Nguyen The Anh, Tran Van Loc, Nguyen Thi Ha Mi, Tran Thi Phuong Thao, Tran Van Sung, Chemical constituents of the barks of Litsea glutinosa collected in Thai Nguyen province, Vietnam, Vietnam Journal of Chemistry 2015, 53(5) 652-656 . 2. Ph m Th Ninh 1,2 , Tr n Thị Phương Thảo1*, Tr n Văn Lộc1, Nguyễn Thị Dung1, Đỗ Xuân Cẩm3, Tr n Văn Sung1, Về thành hóa học từ dịch chiết etyl axetat của cây Nhãn dê (Lepisanthes rubiginosa) thu hái tại huyện Phú Lộc tỉnh Thừa Thiên - Huế, Tạp chí Hóa học, 2017, 53 (1): 1-5. 3. Tran Thi Phuong Thao, 1 Pham Thi Ninh, 1,2 Tran Van Loc, 1 Nguyen Tuan Thanh, 1 and Tran Van Sung, 1 * Chemical constituents, cytotoxic and alpha- glucosidase inhibitory activity of the isolated compound from Litsea glutinosa collected in Thua Thien Hue province, Vietnam Accepted by Chemistry of Natural Compounds. 4. 1 Pham Thi Ninh 1,2 , Tr n Văn Lộc1, Tran Thi Phuong Thao1*, Về thành ph n hóa học và hoạt tính sinh học của cây Bời lời nhớt Thái Nguyên và Thừa Thiên Huế Tạp chí Hóa học 2018, 56 (1) 5. Tran Van Loc, Pham Thi Ninh 1,2 , Tran Thi Phuong Thao, Tran Van Sung. Two new oleanolic acid glycoside from Lepisanthes rubiginosa, a mangrove plant collected from the beach of Thua Thien - Hue province, Vietnam, Nat. Prod. Res. 2018, submitted. 135 TÀ L ỆU T A O 1. Fijridiyanto I. A., Murakami N., Phylogeny of Litsea and related genera (Laureae-Lauraceae) based on analysis of rpb2 gene sequences, Journal of Plant Research (2009), 122, 283-298. 2. Wang Y.S, Wen Z. Q, Li B.T, Zhang H. B,and Yang J.H, Ethnobotany, phytochemistry, and pharmacology of the Genus Litsea:Journal of Ethnopharmacology (2016),181, 66–107. 3. Phạm Hoàng Hộ 1999), ây cỏ Việt Nam,trang 356, tập 1, Quyển I NX trẻ 4. V Văn hi Từ điển cây thuốc Việt N m, (1999), trang 130. 5. Masoumeh H., Jamaludin M., Mohammad A. Khalilzadeh, Mohammad R. Z , J anni H , M h i R , “Isolation and characterization of bioactive compounds from the bark of Litsea costalis”, Journal of phytochemistry and phytobiology B: Biology. (2013), 128,85- 91. 6. Kathryn Ana B. S. da S., Luiz Carlos K. J., Sully M. Cruz A. C., Nara L. M. Q., Franco D. M.e, Valdir C. F., Anti-inflammatory and anti-hyperalgesic evaluation of the condiment laurel (Litsea guatemalensis Mez.) and its chemical composition, Food Chemistry (2012), 132, 1980–1986. 7. Agrawal N., Choudhary A.S., Sharma M.C., Dobhal M.P., Constituents of Plants from the Genus Litsea, Chemistry & Biodiversity (2011), 8, 223-243. 8. Lã Đ nh Mỡi chủ i n), Lưu Đàm ư, Tr n Minh Hợi, Nguyễn Thị Thúy, Nguyễn Thị Phương Thảo, Tr n Huy Th i và Ninh Khắc ản, Tài nguy n thực vật có tinh u ở Việt Nam, Nx Nông nghiệp, Hà Nội (2001), tập 1, 179-241. 9. Li X.W., Li J., Huang P.H., Werff H.V.D., Flora of China, Science Press, Beijing (1980), 7, 118-122. 10. Feng T., Zhang R. T., Tan Q. G., Zhang X. Y., Liu Y. P., Cai X. H., Luo X. D., Two New Isoquinoline Alkaloids from Litsea cubeba, Zeitschrift für Naturforschung B (2009), 64, 871-874. 11. Wang H. W., Liu Y. Q., Chemical composition and antibacterial activity of essential oils from different parts of Litsea cubeba, Chemistry & Biodiversity (2010), 7, 229-235. 12. Hwang J. K., Choi E. M., Lee J. H., Antioxidant activity of Litsea cubeba, 136 Fitoterapia (2005), 76, 684-686. 13. Sohn E., Kim J., Kim C. S., Lee Y. M., Jo K., Shin S.D., Kim J. H., Kim J. K., The extract of Litsea japonica reduced the development of diabetic nephropathy via the inhibition of advanced glycation and products accumulation in db/db mice, Evidence-based Complementary and Alternative Medicine (2013), 769416. 14. Koo H. J., Yoon W. J., Sohn E. H., Ham Y. M., Jang S. A., Kwon J., Jeong Y. J., Kwak J. H., Sohn E., Park S. Y., Jang K. H., Namkoong S., Han H. S., Jung Y. H., Kang S. C., The analgesic and anti-inflammatory cts o Litsea japonica fruit are mediated via suppression of NF-κ an JNK/p38 MAPK activation. International Immunopharmacology (2014), 22, 84–97. 15. Jeong W. S., Jun M., Kong A. N., Nrf2: A potential molecular target for cancer chemoprevention by natural compounds, Antioxidants & Redox Signaling (2006), 8, 99–106. 16. Kim J., Kim C. S., Lee I. S., Lee Y. M., Sohn E., Jo K., Kim J. H., Kim J. S., Extract of Litsea japonica ameliorates blood-retinal barrier breakdown in db/db mice, Endocrine (2014) 46, 462-469. 17. Kim J., Kim C. S., Lee Y. M., Sohn E., Jo K., Kim J. S., Litsea japonica extract inhibits neuronal apoptosis and the accumulation of advanced glycation end products in the diabetic mouse retina, Molecular Medicine Reports (2015), 12, 1075-1081. 18. Sun Y. X., Lu Y. X., Wang L. Y., Study on the mechanism of action of total flavonoids of Litsea coreana for reducing blood glucose level in rat with type 2 diabetes mellitus, Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi (2010), 30, 617-62. 19. Shen T., Chen X.M., Harder B., Long M., Wang X. N., Lou H. X., Wondark G. T., Ren D. M., Zhang D. D., Plant extracts of the family Lauraceae: a potential resource for chemopreventive agents that activate the nuclear factor-erythroid 2-related factor 2/antioxidant response element pathway, Planta Medica (2014) 80, 426-434. 20. Phukan S., Kalita M. C., Phytopesticidal and repellent efficacy of Litsea salicifolia (Lauraceae) against Aedes aegypti and Culex quinquefasciatus, Indian journal of experimental biology, (2005), 43, 472-474. 21. Zhang Z., Zhang H. L., Wang Y., Zhao X., Study on the chemical constituents of the essential oil from the leaves of Litsea pungens Hemsl, 137 Natural Product Research and Development (1992), 4, 20-23. 22. Zhao L. Q., Advanced Research on Terpenoids in Litsea and the biological Activity, Lishizhen Medicine and Materia Medica Research (2006), 17, 935-938. 23. Xie Z. W., Yu Y. Q., The Guide of National Chinese Herbal Medicine (I), People's Medical Publishing House, Beijing (1996). 24. Tomita M., Lu S., Lan P. K., Studies on the alkaloids of Formosan lauraceous plants. V. Alkaloids from Litsea cubeba Persoon. Yakugaku Zasshi (1965),85,593-596. 25. Xie H. H., Zhang F. X., Wei X. Y., Liu M. F., A review of the studies on Litsea Alkaloids, Journal of Tropical and Subtropical Botany (1999), 7, 87-92. 26. Zhang A., Zhang Y., Branfman A. R., Baldessarini R. J., Neumeyer J. L., Advances in Development of Dopaminergic Aporphinoids, Journal of Medicinal Chemistry (2007), 50, 171-181. 27. Custódioa D. L., Junior V. F. D. V., Lauraceae alkaloids, RSC Advances (2014), 4, 21864-21890. 28. Liu R., Zhang H. C., Zhou F., Wang R. M., Tu Q., Wang J. Y., Flavonoids and alkaloids from the leaves of Litsea fruticosa, Biochemical Systematics and Ecology (2013), 50, 293-295. 29. Wu Y. C., Liou J. Y., Duh C. Y., Lee S. S., Lu S. T., Lidebamine, a novel phenanthrene alkaloid from Litsea cubeba. Tetrahedron Letters (1991), 32, 4169–4170. 30. Lee S. S., Chen C. K., Huang F. M., Chen C. H., Two Dibenzopyrrocoline Alkaloids from Litsea cubeba, Journal of Natural Products (1996), 59, 80-82. 31. Zhang W., Hu J. F., Lv W. W., Zhao Q. C., Shi G. B., Antibacterial, Antifungal and Cytotoxic Isoquinoline Alkaloids from Litsea cubeba, Molecules (2012), 17,12950-12960. 32. Sulaiman S. N., Hadi A. H. A., Awang K., Hazni H., Zahari A., Litaudon M., Zaima K., Morida H., Lancifoliaine, a New Bisbenzylisoquinoline from the Bark of Litsea lancifolia, Molecules (2011), 16, 3119-3127. 33. Takeda K., Sakurawi K., Ishii H., Components of the Lauraceae family-I: New lactonic compounds from Litsea japonica, Tetrahedron (1972), 28, 3757-3766. 34. Pan P. C., Cheng M. J., Peng C. F., Huang H. Y., Chen J. J., Chen I. S., Secondary Metabolites from the Roots of Litsea hypophaea and Their 138 Antitubercular Activity, Journal of Natural Products (2010a), 73, 890-896. 35. Tanaka H., Takaya Y., Toyoda Y., Yasuda T., Sato M., Murata J., Murata H., Kaburagi K., Iitae O., Sugimurae K., Sakai E., Two new butanolides from the roots of Litsea acuminate, Phytochemistry Letters (2015), 11, 32-36. 36. Zhang H. J., Tan G. T., Hoang V. D., Hung N. V., Cuong N. M., Soejarto D. D., Pezzuto J. M., Fong H. H., Natural anti-HIV agents. Part 2: Litseaverticillol A, a prototypic litseane sesquiterpene from Litsea verticillata, Tetrahedron Letters (2001), 42, 8587– 8591. 37. Trisonthi P., Sato A., Nishiwaki H., Tamura H., A New Diterpene from Litsea cubeba Fruits: Structure Elucitation and Capability to Induce Apoptosis in HeLa Cells, Molecules (2014), 19, 6838-6850. 38. Zhao M, Gödecke T, Gunn J, Duan JA, Che CT, Protostane and fusidane triterpenes: a mini-review, Molecules (2013),18(4):4054-80) 39. Wang Y. S., Huang R., Li Y., Shang W. B., Chen F., Zhang H. B., Yang J. H., Panamonon A and B, a pair of novel tetrahydrobenzofuran derivatives from Litsea panamonja (Nees) Hook. f., Phytochemistry Letters (2013), 6, 26-30. 40. Toshio N., XV. Isolation of quercitrin and astilbin from young leaves of Litsea glauca, Nippon Nō ei u K ishi (1953), 27, 469-472. 41. Yang, Y., Jiang, J.Z., Qimei, L.B., Yan, X.J., Zhao, J.X., Yuan, H.Z., Qin, Z.H., Wang, M.G., The Fungicital Terpenoids and Essential Oil from Litsea cubeba in Tibet, Molecules (2010), 15, 7075-7082. 42. Tsai S. F., Lee S. S. Flavonoid Composition in the Leaves of Twelve Litsea and NeoLitsea Plants. Journal of the Chinese Chemical Society (2011), 58, 376-383. 43. Li L., Zhao X. T., Luo Y. P., Zhao J. F., Yang X. D., Zhang H. B, Novel cytotoxic chalcones from Litsea rubescens and Litsea pedunculata, Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters (2011), 21, 7431-7433. 44. Liu R, Zhang H. C., Zhou F., Wang R. M., Tu Q., Wang J. Y., “Flavonoids and alkaloids from the leaves of Litsea fruticosa”, Biochemical Systematics and Ecology (2013), 50, 293-295. 45. Hoseinzadeh M., Mohamadeh J., Khalilzadeh M. A., Zardoost M. R., Haak J., Rajabi M, isolation of bioactive compounds from the bark of Litsea costalis, Journal of photochemistry and photobiology (2013), 128, 85-91. 46. Saikia A. K., D. Chetia, M D‟ Arrigo, A Sm riglio, T Stracno, G Ru rto, Screening of fruit and leaf essential oil of Litsea cubeba Pers. from North- East India-Chemical composition and antimicrobial activity. Journal of 139 Essential Oil Research (2013), 25(4): 330- 338. 47. Zhu L. Y., Li B., Lu N. X., Aromatic plants and essential oil constituents, Hai Feng Publishing, Hong Kong China (1993). 48. Wang, H.W., Liu, Y.Q., Chemical composition and antibacterial activity of essential oils from different parts of Litsea cubeba, Chemistry & Biodiversity, (2010), 7, 229-235. 49. Bighelli A., Muselli J., Casanova J., Tam N. T., Anh V. V., Bessies M., Chemical Variability of Litsea cubela leaf Oil from Viet Nam, Journal of Essential Oil Research, (2005), 17(1): 86. 50. Thắng T Đ , Dũng N. A., Dũng N. X., Nghi n cứu thực vật học và hóa học chi Litsea ở Việt Nam- o c o Khoa học về Sinh th i và Tài nguy n Sinh vật, ội n hị Kho học toàn quốc lần thứ nh t. Nxb. Nôn n hiệp, à Nội, (2005) 637-642. 51. Thang T. D., Hien H. H., Thuy T., Dung N. X. Volatile Constituents of the leaf oil of Litsea euosma J. J. Sm.from Viet Nam. Journal of Essential oil and oil Bearing Plants (2006), 9(2); 122-125. 52. L ông Sơn, Dương Đức Huyến, Tr n Đ nh Thắng, Đỗ Ngọc Đài, “Thành ph n hóa học của tinh u loài ời lời cam ốt và loài ời lời đỏ tươi ở vườn quốc gia ạch Mã’’, Tạp ch Sinh học (2013), 35(3), 301-305.. 53. L ông Sơn, Tr n Đ nh Thắng, Đỗ Ngọc Đài, Dương Đức Huyến, Tr n Huy Th i, “Thành ph n hóa học của tinh u loài ời lời trâm (Litsea eugenoides A. Chev.) ở vườn quốc gia ạch Mã”, ội n hị ho học toàn quốc về Sinh th i và Tài n uy n sinh vật lần thứ 5 (2012). 54. Linlin Si, Yicun Chen, Xiaojiao Han, Zhiyong Zhan, Shengping Tian, Qinqin ui an Yang ong Wang, “ h mical composition of essential oils of Litsea cubeba harvested from its istri ution ar as in hina”, Molecules (2012), 17, 7057-7066. 55. Carol V., Roser V. R. V., Sully M., Cruz Sully M.Cruz, Armando C. A. C., Salva or S ,“Th ss ntial oil o tain y hy ro istillation rom th leaves of Litsea guatemalensis” Flavour and Fragrance Jourmal (2005), 20(4), 415-418. 56. Ho C. L., Jie-Pinge O., Liu Y. C., Hung C. P., Tsai M. C., Liao P. C., Wang E. I. C., Chen Y. L., Su Y. C., Compositions and in vitro anticancer activities of the leaf and fruit oils of Litsea cubeba from Taiwan. Natural Product 140 Communications (2010a), 5, 617–620, 57. Seal S., Chatterjee P., Bhattacharya S., Pal D., Dasgupta S., Kundu R., Mukherjee S., Bhattacharya S., Bhuyan M., Bhattacharyya P.R., Baishya G., Barua N.C., Baruah P.K., Rao P.G., Bhattacharya S., Vapor of volatile oils from Litsea cubeba seed induces apoptosis and causes cell cycle arrest in lung cancer cells. PLoS One (2012), 7(10) 1-11. 58. Guo Q., Zeng K.W., Gao X.L., Zhu Z.X., Zhang S.Y., Chai X.Y., Tu P.F.,. Chemical constituents with NO production inhibitory and cytotoxic activities from Litsea cubeba. Journal of Natural Medicines (2015),69,94-99. 59. Wang T. A., Cheng M. J., Lee S. J., Yang C. W., Chang H. S., Chen I. S., Secondary Metabolites from the Leaves of Litsea lii var. nunkaotahangensis. HeIvetica Chimica Acta (2008), 91, 1036–1044. 60. Chang S. Y., Cheng M. J., Kuo Y. H., Lee S. J., Chang H. S., Chen I. S., Secondary metabolites from the stem bark of Litsea akoensis and their cytotoxic activity. HeIvetica Chimica Acta (2008), 91,1156-1165. 61. Li L., Zhao X. T., Luo Y. P., Zhao J. F., Yang X. D., Zhang H. B. Novel cytotoxic chalcones from Litsea rubescens and Litsea pedunculata. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters (2011), 21, 7431-7433. 62. Ni F., Zhou C. Q., Qiu S. P., Experimental study on the anti-tumer effect of polysaccharide from Litsea pungens Hemsl. Root. Pharmacology and clinics of Chinese Materia Medica (2003), 19, 13-15. 63. Paydar M., Kamalidehghan B., Wong Y. L., Wong W. F., Looi C. Y., Mustafa M. R., Evaluation of cytotoxic and chemotherapeutic properties of boldine in breast cancer using in vitro and in vivo models. Drug Design, Development and Therapy (2014), 8, 719- 733. 64. Choi E. M., Hwang J. K., Effects of methanolic extract and fractions from Litsea cubeba bark on the production of inflammatory mediators in RAW264.7 cells. Fitoterapia (2004), 75,141-148. 65. Gogoi D., Bezbaruah R. L., Bordoloi M., Sarmah R., Bora T. C., Insights from the docking analysis of biologically active compounds from plant Litsea Genus as potential COX-2 inhibitors. Bioinformation (2012), 8, 812-815. 66. Lin B., Zhang H., Zhao X. X., Rahman K., Wang Y., Ma X. Q., Zheng C. J., Zhang Q. Y., Han T., Qin L. P., Inhibitory effects of the root extract of Litsea cubeba (Lour.) Pers. on adjuvant arthridis in rats. Journal of 141 Ethnopharmacology (2013), 147, 327-334. 67. Zhong J., Ma T., Huang C., Liu H., Chen Z., Cao L., Zhong J., Liu H. Z., Flavonoids from Litsea coreana decreases TNF-α s cr tion rom p ridoneal macrophages in adjuvant-induced arthridis rats via UPR pathway, American Journal of Chinese Medicine (2014), 42, 905-919. 68. Lin C. T., Chu F. H., Tseng Y. H., Tsai J. B., Chang S.T., Wang S.Y., Bioactivity Investigation of Lauraceae Trees Grown in Taiwan. Pharmaceutical Biology (2007), 45, 638-644. 69. Silva K. A. B. S., Klein-Junior L. C., Cruz S. M., Cáceres A., Quintão N. L. M., Monache F. D., Cechinel-Filho V., Anti-inflammatory and anti- hyperalgesic evaluation of the condiment laurel (Litsea guatemalensis Mez.) and its chemical composition. Food Chemistry (2012), 132, 1980–1986. 70. Tang W.J., Zhang Y. L., Xiao Q. P., Huang C., Jin Y., Li J., Four flavanocoumarins from the leaves of Litsea coreana LEVL. Chemistry & Biodiversity (2013a), 10, 1128-1132. 71. Tang W., Lu W., Cao X., Zhang Y., Zhang H., Lv X., Li J., Two new dihydrostilbenoid glycosides isolated from the leaves of Litsea coreana and their antiinflammatory activity. Natural Product Communications (2013b), 8, 479-480. 72. Tu X. Y., Zou K. R., Huang Z. W., Tang T., Xu X. Q., Studies on antibiotic activity of Litsea cubeta oil. Zhongyao Tongbao (1985), 10, 231-232. 73. Yang Y., Jiang J. Z., Qime L. B., Yan X. J., Zhao J. X., Yuan H. Z., Qin Z. H., Wang M.G., The Fungicital Terpenoids and Essential Oil from Litsea cubeba in Tibet. Molecules (2010), 15, 7075-7082. 74. Wang F., Yang D., Ren S., Zhang H., Li R., Chemical composition of essential oil from leaves of Litsea cubeba and its antifungal activities. Journal of Chinese Medicinal Materials (1999), 22, 400-402. 75. Wang H. W., Liu Y. Q., Chemical composition and antibacterial activity of essential oils from different parts of Litsea cubeba. Chemistry & Biodiversity (2010), 7, 229-235. 76. Muhammed A. M., Subbu R. M., Jirovetz L., Mohamed S. P., Composition and antimicrobial analysis of the essential oil of Litsea laevigata Nees. (Lauraceae). Natural Product Communications (2008), 3, 1069-1072. 77. Ho C. L., Wang E. I. C., Lee P. Y., Su Y. C., Composition and antimicrobial activity of the leaf essential oils of Litsea nakaii from Taiwan. Natural 142 Product Communications (2009a), 4, 865-868. 78. Ho C. L., Wang E .I. C., Hsu K. P., Lee P. Y., Su Y. C., Composition and antimicrobial activity of the leaf essential oil of Litsea kostermansii from Taiwan. Natural Product Communications (2009b), 4:1123-1126. 79. Ho C. L., Wang E. I. C., Hsu K. P., Tseng Y. H., Liao P. C., Lin C. N., Chou J. C., Su Y. C., Composition and antimicrobial activity of the leaf and twig oils of Litsea mushaensis and L. linii from Taiwan. Natural Product Communications (2010c), 5, 1823-1828. 80. Ho C. L., Liao P. C., Wang E. I. C., Su Y. C., Composition and antimicrobial activity of the leaf and twig oils of Litsea acutivena from Taiwan. Natural Product Communications (2011b), 6, 1755-1758. 81. Su Y. C., Ho C. L., Composition and Two Activities of the Leaf Essential Oil of Litsea acuminata (Blume) Kurata from Taiwan. Records of Natural Products (2013), 7, 27-34. 82. Ar an M , Amin H , Kosińs a A , Karamać M , Amarowicz R , Antioxidant activity of phenolic fractions of Litsea monopetala (Persimon-leaved Litsea) bark extract. Polish Journal of Food and Nutridion Sciences(2008), 58, 229-233. 83. Wong M. H., Lim L. F., Ahmad F. B., Assim Z. B., Antioxidant and antimicrobial properties of Litsea elliptica Blume and Litsea resinosa Blume (Lauraceae). Asian Pacific Journal of Tropical Medicine (2014), 4, 386-392. 84. Ye H., Yu J., The preliminary studies on antioxidation of three kinds of flavoniods from Litsea coreana, Zhong Yao Cai (2004), 27, 113-115. 85. Yuan M., Jia X .J., Ding C. B., Yuan S., Zhang Z. Q., Chen Y. E., Comparative studies on bioactive constituents in hawk tea infusions with different maturidy degree and their antioxidant activities, Scientific World Journal (2014), 838165. 86. Sun Y. X., Lu Y. X., Wang L. Y., Study on the mechanism of action of total flavonoids of Litsea coreana for reducing blood glucose level in rat with type 2 diabetes mellitus. Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi (2010), 30, 617-621. 87. Sohn E., Kim J., Kim C. S., Lee Y. M., Jo K., Shin S.D., Kim J. H., Kim J. K., The extract of Litsea japonica reduced the development of diabetic nephropathy via the inhibition of advanced glycation end products accumulation in db/db mice. Evidencebased Complementary and Alternative 143 Medicine (2013), 769416. 88. Kim J., Kim C. S., Lee I. S., Lee Y. M., Sohn E., Jo K., Kim J. H., Kim J. S., Extract of Litsea japonica ameliorates blood-retinal barrier breakdown in db/db mice. Endocrine (2014), 46, 462-469. 89. Kim J., Kim C. S., Sohn E., Lee Y. M., Jo K., Kim J. S., Litsea japonica Extract Inhibits Aldose Reductase Activity and Hyperglycemia-Induced Lenticular Sorbitol Accumulation in db/db Mice. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine (2015):747830. 90. Chen W. Y., Ko F. N., Wu Y. C., Lu S. T., Teng C. M., Vasorelaxing effect in rat thoracic aorta caused by laurotetanine isolated from Litsea cubeba Persoon. The Journal of Pharmacy and Pharmacology (1994), 46,380-382. 91. Chen K. S., Ko F. N., Teng C. M., Wu Y. C., Indolopyridoquinazoline alkaloids with antiplatelet aggregation activity from Zanthoxylum integrifoliolum. Planta Medica (1996b), 62, 133-136. 92. Huang C. H., Huang W. J., Wang S. J., Wu P.H., Wu W. B., Lidebamine, a phenanthrene alkaloid from the wood of Litsea cubeba, inhibits rat smooth muscle cell adhesion and migration on collagen. European Journal of Pharmacology (2008), 31, 25- 31. 93. Sulaiman S. N., Hadi A. H. A., Awang K., Hazni H., Zahari A., Litaudon M., Zaima K., Morida H., Lancifoliaine, a New Bisbenzylisoquinoline from the Bark of Litsea lancifolia. Molecules (2011), 16, 3119-3127. 94. Liu, J.H., Effect of Glede Tea to blood sugar and blood fat of rats. Chinese Journal of the Practical Chinese Modem Medicine (2003),3, 2057. 95. Huang C., Ma T., Meng X., Lv X., Zhang L., Wang J., Li J., Potential protective effects of a traditional Chinese herb, Litsea coreana Levl., on liver fibrosis in rats. Journal of pharmacy and pharmacology (2010), 62, 223-230. 96. Hu C. M., Cao Q., Lv X .W., Cheng W. M., Li R., Li J., Protective effects of total flavonoids from Litsea coreana on alcoholic fatty liver in rats associated with downregulation adipose differentiation-related protein expression. American Journal of Chinese Medicine (2012), 40, 599-610. 97. Hoang V. D., Tan G. T., Zhang H. J., Tamez P. A., Hung N. V., Cuong N. M., Soejarto D. D., Fong H. H., Pezzuto J. M., Natural anti-HIV agents-part I: (+)- demethoxyepiexcelsin and verticillatol from Litsea verticillata, 144 Phytochemistry (2002), 59, 325- 329. 98. Zhang H. J., Tan G. T., Hoang V. D., Hung N. V., Cuong N. M., Soejarto, D.D., Pezzuto J. M., Fong H. H., Natural anti-HIV agents-Part 3: Litsea verticillols A-H, novel sesquiterpene from Litsea verticillata, Tetrahedron (2003b), 59: 141–148. 99. Poonia B. S., Sasmal D., Mazumdar P. M., Anti-diarrheal activity of methanol extract of Litsea polyantha bark in mice. Fitoterapia (2007),78, 171-174. 100. Ageel A. M., Islam M. W., Ginawi O. T., Al-Yahya M. A., Evaluation of the aphrodisiac activity of Litsea chinensis (Lauraceae) and Orchis malculata (Orchitaceae) extracts in rats. Phytotherapy Research (1994), 8,103-105. 101. Mandal, S.C., Kumar, C.K., Majumder, A., Majumder, R., Maity, B.C., Antibacterial activity of Litsea glutinosa bark. Fitoterapia (2000), 71, 439-441. 102. Pradeepa K., Krishna V., Kumar K. G., Thirumalesh B. V., Kumar K. J. N., « Antibacterial screening of the stem bark and leaf extracts of Litsea glutinosa (Lour.) C.B. Rob- an ethnomedicinally important tree of the Western Ghats », Pharmacognosy Journal, 3 (21), (2011), 72-76. 103. Hosamath P. V., «Evaluation of antimicrobial activity of Litsea glutinosa», Inter. J. Pharm. Appl (2011), 2 (1), 105-114. 104. Devi P., « Study of antioxidant, antiinflammatory and wound healing activity of extracts of Litsea glutinosa” J. Pharm. Sci & Res., 2 (2), (2010), 155-163. 105. Palanuvej C., Hokputsa S., Tunsaringkarn T., Ruangrungsi N., « In vitro glucose entrapment and alpha-glucosidase inhibition of mucilaginous subtances from selected Thai medicinal plants », Sci. Pharm., 77, (2009), 837-849. 106. Pari h P , Sur sh , Rangr z A , “Ost oprot ctiv ct o Litsea glutinosa in ovari ctomiz wistar rats ”, Electronic Journal of Pharmacology and Therapy, 2, (2009), 81-86. 107. Lohitha P., Muchandi I. S., Yogesh H. S., Shambhu C. K., Chandrashekar V. M., “Evaluation o Litsea glutinosa bark on immobilization stress induced sexual behavior and fertility o mal rats ”, Pharmacology online 1, (2009), 188-199. 108. P. H. Parikh, A. Y. Rangrez, « Extraction and phytochemical evaluation of Litsea glutinosa bark methanolic extract », Journal of Applied Pharmaceutical Science 02 (05), (2012), 71-78. 109. Yang J H , Li L , Wang Y S , Zhao J F , Zhang H , Luo S D , “Two n w aporphine alkaloids from Litsea glutinosa, Helvetica Chimica acta, 88, 145 (2005), 2523-2526. 110. Wang Y S , Huang R , Lu H , Li F Y , Yang J H , “A n w 2‟-oxygenated flavone glycoside from Litsea glutinosa Lour ) Ro ”, Biosci. Biotechnol. Biochem, 74(3), (2010), 652-654. 111. Wang Y. S., Liao Z., Li Y., Huang R., Zhang H. B., Yang J. H., A new megastigmane diglycoside from Litsea glutinosa (Lour.) C. B. Rob., J. Braz. Chem. Soc., 22 (11), (2011), 2234-2238. 112. Pan J. Y., Zhang S., Wu J , Li Q X , Xiao Z H , „„Litseaglutinan A and Lignans from Litsea glutinosa”, Helvetica Chimica Acta, 93, (2010), 951-957. 113. Agrawal N., Pareek D., Dobhal S., Sharma M. C., Joshi Y. C., Dobhal M. P., “ utanolides from methanolic extract of Litsea glutinosa”, Chemistry and Biodiversity, 10 (2013), 394-400. 114. Das D., Maiti S., Maiti T K , Islam S S , “A n w ara inoxylan rom gr n leaves of Litsea glutinosa Laura a) ”, Carbohydrate Polymers, 92, (2013), 1243-1248. 115. how hury J U , huiyan M N I , Nan i N , “Aromatic plants o Bangladesh: essential oils of leaves and fruits of Litsea glutinosa (Lour.) C. Ro inson”, Bangladesh J. Bot, 37 (1), (2008), 81-83. 116. Xu Y., Zhou H, Ren D, Lou H, Shen T. Chemical constituents from the aerial parts of Litsea glutinosa (Lour.) C. B. Rob.. Journal of Shandong University (Health Sciences) (2016); 54 (3): 45-49. 117. N.T. Hien, T. D. Thang, D. N. Dai, T. H. Thai, « Chemical composition of the leaf oil of Litsea glutinosa (Lour.) C. B. Rob. rom Ha Tinh provinc ”, VNU Journal of Science, Natural Science and Technology, 26 (2010), 161-164. 118. Lecomte H., Flore de l'. Indochine, (1912), 1: 1001-1053. 119. Gagnepain F., 1950: Suppl. Flore de l'.Indochine, I (4): 915-989. 120. Phạm Hoàng Hộ: ây thuốc việt N m (2000), II, 318-320, Nx Tuổi trẻ TP Hồ h Minh 121. Tr n Kim Li n & Hà Minh Tâm, Danh m c c c loài cây thuốc Việt Nam, (2003) 2: 1020-1022, Nx Nông nghiệp, Hà Nội 122. V Văn hi, tập 2, 2012) T. 432 123. “Nhãn dê - M c Thuốc Đông Y của trang mạng Y Học ổ Truyền Tuệ Tĩnh ” [Online].Available: 146 /thuocdo ngy/N/NhanDe.htm&key=&char=N. 124. Meena N., Jeya M., Aroimugame S., Arumugam P., and sagadevan E., “Gr n synth sis o silver nanoparticles using leaves of Lepisanthes tetraphylla and evaluation of their antibacterial activity against drug resistant clinical isolat s ,” Int. J. Pharma Bio Sci., (2012), vol. 3, pp. 593-594. 125. Lomchit P., Nasomjai P., Kanokmedhakul S., Boonmak J., Youngme S., and Kanokmedhakul K., “ ioactiv Lupan an Hopan Triterpenes from Lepisanthes senegalensis,” Planta Med., (2016), pp. 2-7. 126. Kuspradini H., Susanto D., and Mitsunaga T., “Phytoch mical an comparative study of anti-microbial activity of Lepisanthes amoena leaves xtract,” J. Biol. Agric. Healthc., (2012), vol. 2, no. 11, pp. 80-87. 127. Salusu H. D., Ariani F., Obeth E., Rayment M., Budiarso E., Kusuma I. W., and Arung E. T., “Phytoch mical scr ning an antioxidant activity of selekop (Lepisanthes amoena) fruit,” AGRIVITA J. Agric. Sci., (2017), vol. 39, no. 2, pp. 214-218. 128. Zhang Y., Wong A. I. C., Wu J., Abdul Karim N. B., and Huang D., “Lepisanthes alata (Malay cherry) leaves are potent inhibitors of starch hydrolases due to proanthocyanidins with high gr o polym rization,” J. Funct. Foods, (2016), vol. 25, pp. 568-578. 129. Salahuddin M. A. H., Othman Z., Ying J. C. L., Noor E. S. M., and Itris S., “Antioxidant Activity and Phytochemical Content of Fresh and Freeze-Dried Lepisanthes fruticosa Fruits at Different Maturidy Stag s,” J. Agric. Sci., (2017), vol. 9, no. 2, p. 147. 130. Batubara I. and Mitsunaga T., “Us o In on sian M icinal Plants Pro ucts Against Acn ,” Rev. Agric. Sci., (2013), vol. 1, no. 0, pp. 11-30. 131. Jayasinghe U. L. B., Kumarihamy B. M. M., Bandara A. G. D., Vasquez E. A., and Kraus W., “Nematicidal Activity o som Sri Lan an Plants,” Nat. Prod. Res., (2003), vol. 17, no. 4, pp. 259-262. 132. Adesanya S. A., Martin M. T., Hill B., Dumontet V., Tri M. V., Sévenet T., and Païs M., “Rubiginoside, a farnesyl glycoside from Lepisanthes rubiginosa,” Phytochemistry, (1999), vol. 51, no. 8, pp. 1039-1041. 133. Pyne S. G., Liawruangrath B., Liawruangrath S., Teerawutkulrag A., and Chuangbunyat J., “A comparativ stu y o th ss ntial oil rom lowers and fruits of lepisanthes rubiginosa Rox ) L nh,” Acta Pharm. Sci., (2011), 147 vol. 53, pp. 535-542. 134. Wiart Christophe, Ethnopharmacology of Medicinal Plants: Asia and the Pacific. British Journal of Clinical Pharmacology. Houghton Press. (2007), 64(2), 248. doi:10.1111/j.1365-2125.2007.02888.x. 135. Marxen K., Vanselow K. H., Lippemeier S., et al., Determination of DPPH Radical Oxidation Caused by Methanolic Extracts of some Microalgal Species by Linear Regression Analysis of Spectrophotometric Measurements, Sensors, (2007), 7, 2080-2095. 136. Burids M. and Bucar F., Antioxidant activity of Nigella sativa essential oil, Phytotherapy Research, (2000), 14, 323–328. 137. Cuendet M., Hostettmann K. and Potterat O., Iridoid glucosides with free radical scavenging properties from Fagraea blumei, Helvetica Chimica Acta, (1997), 80, 1144–1152. 138. Brand-Williams W, Cuvelier ME, Berset C. Use of free radical method to evaluate antioxidant activity.Lebensm Wiss Technology (1995); 28: 25-30. 139. Monks A., Scudiero D., Skehan P., Shoemake R., et al., Feasibility of a high- flux anticancer drug screen using a diverse panel of cultured human tumor cell lines, Journal of National Cancer Institute, (1991), 11 (83), 757-766. 140. Scudiero D. A., Shoemaker R. H., Paull K. D., et al., Evaluation of a soluble Tetrazolium/Formazan assay for cell growth and drug sensivity in culture using human and other tumor cell lines, Cancer Research, (1988), 48, 4827-4833. 141. Kardono L. B. S., Angerhofer C. K., Tsauri S., et al., Cytotoxic and antimalarial constituents of the roots of Eurycoma longifolia, J. Nat. Prod., (1991), 5 (54), 1360-1367. 142. Alley M. C., scudiero D. A., Monks A., Hursey M. L., Czerwinski M. J., et al., Feasibility of drug screening with panels of human tumor cell lines using a microculture tetrazolium assay, Cancer Research, (1988), 48, 589-601. 143. Shoemaker R. H., Scudiero D. A., Suasville E. A., Application of high- throughput, molecular – targeted screening to anticancer drug discovery, Curr. Top. Med. Chem., (2002), 2 (3), 229-246. 144. Mossmann T, Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods (1983); 65: 55-63. 145. Kim Y. M., Wang M. H., Rhee H. I., A novel glucosidase inhibitor from pine 148 bark, Carbohydr. Res., (2004), 339, 715–717. 146. Li T., Zhang X. D., Song Y. W., Liu J. W., A Microplate-Based Screening Method for -Glucosidase Inhibitors, Nat. Prod. Res. Dev., (2005), 10, 1128–1134. 147. Chen H., Yan X., Lin W., Zheng L., Zhang W., A New Method for -Glucosidase Inhibitors and Application to Marine Microorganisms, Pharmaceutical Biology, (2004), 42 (6), 416–421. 148. Hakamata W., Kurihara M., Okuda H., Nishio T., Oku T., Design and screening strategies for alpha-glucosidase inhibitors based on enzymological information, Curr. Top. Med. Chem., (2009), 9 (1), 3-12. 149. Adisakwattana S., Charoenlertkul P., Yibchok-Anun S., Alpha-glucosidase inhibitory activity of cyaniting-3-galactoside and synergistic effect with acarbose. J. Enzyme Inhib. Med. Chem (2009), 24, 65-69. 150. Yananrday R., Colac H., Effect chard (Beta vulgaris L. varcicla) on blood glucose level in normal and alloxan-induced diabetic rabbit. J. Ethnophamacol (1998), 4: 309-311. 151. Akhila J. S., Deepa S., Alwar M. C., Acute toxicity studies and detemination of median lethal dose, Curr. Sci. (2017), 93, 917-920. 152. Olennikov D. N., Tankhaeva L. M., Partilkhaev V. V., Rokhin A. V., Chemical constituents of Caragana bungei shoots. Brazilian Journal of Pharmacognosy (2012); 22 (3): 490-496. 153. Guvenalp Z, Kilic N, Kazaz C, Kaya Y, Demirezer O. Chemical constituents of Galium tortumense.Turk J Chem (2006), 30: 515-523. 154. Trinh Thi T, Tran Van S, Nguyen Thi H, A. Study on the chemical constituents of Fissistigma pallens. Vietnam Journal of Chemistry (2006), 44 (4): 412-417. 155. Bose S, Maji S, Chakraborty P. Quercitrin from Ixora coccinea leaves and its antioxidant activity. Journal of Pharma Sci Tech (2013), 2 (2): 72-74 156. Chong W. K., Takao N., Momoyo I., Atushi K., On the alkaloid cell and contained alkaloids of Dicentra spectabilis (Papaveraceae). Shoyakugaku Zasshi (1992), 46 (2): 109-114. 157. Hochquemiller R., Rasamizafy S., Alcaloides Annonacees XXXVII: alcaloides du Guatteria scandens. Journal of Natural Product (1983), 46: 335-341. 158. Saxena N. K, Bakuni D. S., The quaternary alkaloids of Cocculus laurifolius 149 DC. Journal of the Indian Chemical Society (1979), 56 (10): 1020-1023. 159. Janssen R. H. A. M., Wijkens P., Kruk C., Biessels H. W. A., Menichini F., Theuns H. G., Assignments of 1 H and 13 C NMR resonances of some isoquinoline alkaloids. Phytochemistry (1990), 29 (10): 3331-3339. 160. Shoei-Sheng L, Yi-Jean L, Chien-Kuang C, Karin CSL, Chung-Hsiung C. Quarternary alkaloids from Litsea cubeba and Cryptocarya konishii. J. Nat. Prod (1993), 56 (11): 1971-1976. 161. Wu J. B., Cheng Y. D., Chiu N. Y., Hoang S. C., Kuo S. C., A Novel Morphinandienone Alkaloid from Fissistigma oldhamii, Planta Med (1993), 59, 179-180 162. Jackman L. M., Trewella J. C., Moniot J. L., Schamma M., Stephens R. L., Wenkoerf E., Leboenf M., Cave A., The carbon- 13 C- NMR spectra of aporphine alkaloids, J. Nat. Prod (1979), 42 (5): 437-449. 163. Nascimento M., Arruda A. C., Arruda M. S. P., Mueler A. H., Yoshioka C. Y., Aripuanin, a megastimane skeleton from Ficus aripuanensis, Fitoterapia (1999), 70: 628-629. 164. Antonio G., Jose A. G., Ravelo A. G., Jimenez I. A., 4,5-Dyhroblumenol A, a new nor-isoprenoid from Perrotteria multiflora, Journal of Natural Product (1994), 57 (3): 400-402. 165. Brown G. D., Phytene-1,2-diol from Artemisia annua, Phytochemistry (1994), 36 (6): 1553-1554. 166. Cui P. H., Zhang W. V., Hook J., Tattam B. N., Duke C. C., Murray M., Synthesis and NMR characterization of the methyl ester of eicosapentanoic acid monoepoxides, Chem. Phys. Lipids (2009), 159 (1), 30-37. 167. Rahman A., Choudtiasy M. I., Hayat S., Khan A. M., Akmad A., Malik S., “Spatozoat an Vatninast rol rom th rown alga Spatoglossum vasia il ”, Phytochemistry (1999), 52, 495-499. 168. Chaturvedula V. S. P., Prakash I., Isolation of stigmasterol and -sitosterol from the dicholormethane extract of Rubus suavissimus, International Current Pharmaceutical Journal (2012), 1(9), 239-242. 169. Pham Duc Thang, Ph.D. thesis, Institute of Chemistry, VAST, 86-87 (2012). 170. Aldrich Library of 13 C & 1 H FTNMR spectra, 1, 168B, (1992). 171. Al drich Library of 13 C & 1 H FTNMR spectra, 1, 169A, (1992). 172. Alemany L. B., Using simple 13 C NMR linewidth and relaxation measurements to make detailed chemical shift assignments in triacylglycerols and related 150 compounds, Chem. Phys. Lipids (2002), 120, 33-44,. 173. Imam S., Azhar I., Mohtasheemul M., Ali M. S. H., Ahmed W., Two Triterpenes lupanone and lupeol isolated and identified from Tamarindus indica Linn., Pak. J. Pharm. Sci. (2007), 20(2), 125-127. 174. Jain P. S., Bari S. B. Isolation of Lupeol, Stigmasterol and Campesterol from Petroleum Ether Extract of Woody Stem of Wrightia tinctoria, Asian Journal of Plant Sciences (2010), 9(3), 163-167. 175. Park Y., Moon B. –H., Yang H., Lee Y., Lee E., Lim Y., Spectral Assignments and Reference Data, Mag. Reson. in Chem. (2007), 45, 1072-1075. 176. Aldrich Library of 13 C and 1 H-NMR Spectra, 1, 757A (NMR) (1992) 177. Stephamie K. V. –W., Parry C., Baird M., Stevenson S., Carlin K., Daniels R., Smith C. R., Jones R., Wello R. S., Ridgway S., Jensen E. D. Increased Dietary Intake of Saturated Fatty Acid Heptadecanoic Acid (C17:0) Associated with Decreasing Ferridin and Alleviated Metabolic Syndrome in Dolphins, PLOS ONE (2015), July 22, 1-17. 178. Fulvia Orsini, Francesca Pelizzon*, Giuliana Ricca and Luisella Verotta, Triterpenen glycosides related to quadranguloside from Passiflora quadrangularis, Phytochemistry (1987), vol, 26, no 4 p 1101-1105,. 179. Antidiabetic Principles of Natural Medicines. III. 1) Structure- Releted Inhibitory Activity and Action Mode of Oleanolic Acid Glycosides on Hypoglycemic Activity, Chem. Pharm.Bull. (1998), 46 (9), 1399-1403. 180. Adesegun S. A., Coker H. A. and Humann H. T., Antifungal Triterpenoid Saponins from Lecaniodiscus cupanioides, Research Journal of Phytochemistry (2008), 2 (2): 93-99. 181. Chaturvedula V. S., Schilling J. K., Miller J. S., Andriantsiferana R., Rasamison V. E, Kingston D. G. I., New cytotoxic oleanane saponins from the infructescences of Polyscias amplifolia from the Madagascar rainforest, Planta Medica (2003), 69, 440–444.