Tiểu luận Chẩn đoán Aujeszky’s Disease Virus (ADV) bằng kỹ thuật nuôi cấy tế bào

2 ông thử nghiệm với 244 mẫu do phòng thí nghiệm chẩn đoán thú y ở Minnesota cung cấp. Mẫu được lấy từ những con heo nghi ngờ nhiễm bao gồm não, amidant, và phổi. Thử nghiệm được thực hiện bằng 2 phương pháp SVA và 24-well plate cell culture.

pdf19 trang | Chia sẻ: lylyngoc | Ngày: 03/12/2013 | Lượt xem: 1540 | Lượt tải: 0download
Bạn đang xem nội dung tài liệu Tiểu luận Chẩn đoán Aujeszky’s Disease Virus (ADV) bằng kỹ thuật nuôi cấy tế bào, để tải tài liệu về máy bạn click vào nút DOWNLOAD ở trên
1  BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TRƯỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM TP. HỒ CHÍ MINH BỘ MÔN CÔNG NGHỆ SINH HỌC ************* Bài tiểu luận CHẨN ĐOÁN AUJESZKY’S DISEASE VIRUS (ADV) BẰNG KỸ THUẬT NUÔI CẤY TẾ BÀO Môn học: Chẩn đoán bệnh gia súc, gia cầm GVHD: TS. Nguyễn Ngọc Hải SVTH: Vũ Thị Phương Thảo Thành phố Hồ Chí Minh Tháng 10/2009 2  Mục lục I. Đặt vấn đề .......................................................................................... 3 II. Tổng quan......................................................................................... 3 II.1 Virus Aujeszky..................................................................... 3 II.1.a Tình hình................................................................. 3 II.1.b Đặc tính, phân loại..................................................4 II.1.c Hình thái và cấu trúc ADV ..................................... 5 II.1.d Sức đề kháng của ADV .......................................... 6 II.1.e Dịch tễ học ..............................................................7 Các loài vật mẫn cảm với ADV.............................7 Đường lây nhiễm ...................................................7 II.1.f Triêu chứng lâm sàng .............................................. 9 II.1.g Bệnh tích...............................................................11 II.2 Phân lập ADV trên môi trường tế bào ...............................11 II.2.a Chuẩn bị mẫu ........................................................12 II.2.b Chuẩn bị môi trường tế bào ..................................14 II.2.c Chẩn đoán ADV bằng Shell Vial Assay...............15 II.2.d Chẩn đoán ADV bằng 24-Well Plate Cell Culture Assay .................................................................15 II.2.e Thí nghiệm của Rafique A. Tahir, Sagar M. Goyal ........................................................................................17 III. Kết luận .........................................................................................18 IV. Tài liệu tham khảo .......................................................................18 3  I. Đặt vấn đề D Aujeszky’s disease virus (ADV) gây ra những thiệt hại to lớn về kinh tế đồi với ngành chăn nuôi heo vì nó làm tăng tỉ lệ chết và gây ra những rối loạn sinh sản ở heo (Pensaert and Kluge, 1989). Vì thế cần có một phương pháp chẩn đoán nhanh sự vấy nhiễm của ADV trong các bầy đàn để kiểm soát một cách hiệu quả sự lây nhiễm của bênh bằng cách cách ly và loại bỏ các đàn gia súc nhiễm nhằm làm giảm những thiệt hại về kinh tế mà ADV đã gây ra. D Nhiều phương pháp đã được sử dụng để chẩn đoán sự vấy nhiễm của ADV, bao gồm sự phân lập virus bằng phương pháp nuôi cấy tế bào, phương pháp miễn dịch peroxidase, phương pháp miễn dịch huỳnh quang, dot-blot, PCR. Mỗi phương pháp đều có những ưu, nhược điểm riêng được so sánh về các mặt độ nhậy, độ đặc hiệu, dễ phát hiện, chi phí và tốc độ. D Trong những năm gần đây, sự phân lập virus bằng shell vial assay (SVA) kết hợp với kĩ thuật miễn dịch huỳnh quang hay miễn dịch peroxidase được sử dụng để phát hiện cytomegaloviruses, herpes simplex virus, respiratory virus. Kĩ thuật SVA nhanh, nhậy và là phương pháp đặc biệt đối với sự chẩn đoán các loại virus này. (b) II. Tổng quan 1) Virus Ạujeszky a) Tình hình D A. Aujeszky đã phát hiện ra bệnh này vào năm 1902 ở Hungary trên bò và chó, đặt tên là bệnh “giả dại” vì ở phần lớn các loài động vật mắc bệnh đều có triệu chứng ngứa ngáy và tự cắn xé mình. Lợn mắc bệnh không có những triệu chứng này mặc dù chỉ riêng lợn là kí chủ tự nhiên của virus. Các động vật mắc bệnh đều có độ mẫn cảm cao, tỉ lệ chết có thể lên tới 100%. 4  D Ở nước ta, bệnh có từ bao giờ chưa rõ, nhưng từ năm 1975 đến nay bệnh có ở khắp các tỉnh phía Nam và nhiều tỉnh phía Bắc (a) D Phân bố • AJD xuất hiện ở hầu hết các quốc gia Châu Âu, Mỹ, Mexico, Cuba, Brazil, Venezuela, Nhật Bản, Đài Loan, Đông Nam Á. • Trong những năm gần đây bệnh đã gia tăng tỷ lệ nhiễm bệnh và trở nên nghiêm trọng tại các vùng có những nông trai chăn nuôi heo tập trung. • Ở Thái Bình Dương, AJD xảy ra ở New Caledonia tới năm 1984, ở Newzealand và ở Polynesia thuộc Pháp (bằng chứng huyết thanh học) tới năm 1999, nó được biết là đã xảy ra ở Samoa, Tonga, Vanuatu, Wallis, Futuna và ở những đàn lợn hoang dã ở Papua New Guinea. Chưa bao giờ có báo cáo từ Úc. ( TM). b) Đặc tính, phân loại D Herpesvirus là một loại virus có một lượng DNA lớn và chu kì sinh sản xảy ra trong nhân tế bào. Họ Herpesviridae được chia làm 3 họ phụ: • Alphaherpesvirinae • Betaherpesvirinae • Gammaherpesvirinae (i) D Aujeszky’s disease (AJD), còn được gọi là bệnh giả dại (pseudorabies), là một căn bệnh do porcine herpesvirus-1 [Aujeszky’s disease virus (ADV), pseudorabies virus (PRV)] gây ra. Virus này thuộc bộ Herpesviridae, giống Alphaherpesvirinae. 5  D ADV nhiễm vào hệ thống thần kinh trung ương và những cơ quan khác, ví dụ như cơ quan hô hấp, nhiễm vào nhiều loại động vật có vú ngoại trừ người và các loài khỉ không đuôi. D Kí chủ tự nhiên của ADV là heo, là một nguồn lây nhiễm tiềm tàng (ngoại trừ heo con dưới 2 tuần tuổi bị chết do viêm não). (g) c) Hình thái và cấu trúc ADV Cấu trúc tổng quát của ADV được cho thấy ở hình 1. • Phần lõi bao gồm một sợi đôi DNA dài khoảng 150 kbp được bao bọc bởi một capsid, vỏ (tegument) và vỏ bọc (envelope). • Bộ gen của ADV bao gồm 2 vùng đơn vị (two unique regions), một đơn vị dài (unique long UL), và một đơn vị ngắn (unique shot US), được cặp sườn bởi 2 trình tự lặp lại, một cái bên trong (an internal one-IRS), một cái ở phía cuối (a terminal one-TRS). Cả bộ gen đã được Klupp và ctv giải trình tự. • Những gen khác nhau trong bộ gen của alphaherpesvirus được chỉ định bởi 2 kí tự là US hay UL phụ thuộc vào vị trí của nó trong đơn vị dài UL hay đơn vị ngắn US theo sau đó là một con số, con số chỉ ra vị trí của mỗi gen trong mỗi vùng đặc biệt. • Vỏ capsid của ADV đóng gói và bảo vệ bộ gen. Nó bao gồm 162 capsomers, 150 hexon (1 hexon có 6 phân tử VP5 là protein được biểu hiện bởi UL19 (pUL19) và 6 phân tử VP26 (pUL35) và 12 penton (11 penton bao gồm 5 phân tử VP5, 1 penton 12 6  phân tử pUL6 và hình thành lỗ xâm nhập hình trụ cho DNA mới sản xuất (newly produced dsDNA), cả hai được liên kết bởi 3 cấu trúc (1 phân tử của VP19C (pUL38) và hai phân tử của VP23 (pUL18) tất cả được xắp xếp trong một hàng rào 20 mặt. • Khoảng trống giữa vỏ capsid và vỏ envelope được lắp đầy với protein tegument. Protein tegument quan trọng trong quá trình xâm nhập và nhân lên của virus, xâm nhập màng bao bọc chính của màng nhân và màng của thể golgi. • Vỏ envelope của virus là một màng phospholipids 2 lớp bao gồm 10 glycoprotein (gB, gC, gD, gE, gH, gI, gK, gL, gM, gN). Vỏ envelope đóng vai trò quan trọng trong việc gắn kết, xâm nhập, đóng gói, thoát ra ngoài. Lan truyền giữa các tế bào, sự đáp ứng miễn dịch của tế bào chủ. (f) d) Sức đề kháng của ADV D Khả năng sống trong môi trường của ADV rất thấp. ADV có thể sống một thời gian ngắn trong môi trường lạnh, ẩm với pH từ 6 đến 8. Môi trường có ánh nắng và khô sẽ giết virus ngay lập tức. (c) 7  D Phần lớn các chất sát trùng, tiêu độc đều có thể tiêu diệt được virus như dung dịch NaOH 1%, trong 6 giờ, formal 3% trong 3 giờ, ở nhiệt độ 60oC virus bị diệt sau 1 giờ. D Virus trong xác chết thối rữa bị diệt sau 10 ngày, trong thịt ướp sau 20 ngày. D Trong nước tiểu lợn bệnh, virus sống 3 tuần, trong chất độn chuồng virus bị bất hoạt trong vòng 8-15 ngày. D Các chất hóa học có hợp chất Clo là thuốc sát trùng có hiệu quả nhất như nước vôi đặc, các chế phẩm Clorua vôi hòa tan trong nước. (a) e) Dịch tễ học D Các loài vật mẫn cảm với ADV • Heo là kí chủ chính của ADV, là nguồn lây nhiễm chính cho một phổ rộng kí chủ thứ hai như bò, cừu, chó, mèo, chuột và loài gặm nhấm. • Ngựa, chim, và người có khả năng kháng ADV. (c) D Đường lây nhiễm • ADV vẫn tồn tại ở dạng tiềm tàng trong suốt thời gian sống của heo bị nhiễm bệnh đã khỏi. Sự lây lan bệnh có thể do trực tiếp tiếp xúc giữa heo khỏe và heo bệnh hoặc mang trùng, có thể qua không khí, cũng có thể lây lan gián tiếp qua chất độn chuồng, dụng cụ chăn nuôi, người chăm sóc… • Dây thần kinh sinh 3 (trigeminal ganglia), bầu khứu giác (olfactory bulbs), hành tủy (medulla), cuống não (brain stem), 8  phổi (lungs), hạch bạch huyết (lymph nodes), tủy sống (spinal cord) là những loại mô chứa virus. • Vào những thời điểm stress như sinh đẻ, virus có thể hoạt động trở lại và lây lan. Những con heo này có biểu hiện bệnh tích nhẹ. • Khi ADV hiện diện trong đàn, sự tiềm tàng và sự hoạt động trở lại cuả virus rất quan trọng khi nghiên cứu sự lan truyền của virus giữa các nông trại hoặc giữa nhóm heo với nhau. • Sự lan truyền của ADV xảy ra bằng nhiều con đường khác nhau, bao gồm: 6 AJD rất dễ lây, chủ yếu lây lan qua con đường hô hấp. Sự lây nhiễm trong đàn thì nhanh nhưng có thể chậm giữa các đàn. 6 Chất tiết từ đường miệng và đường mũi, nước tiểu là một nguồn bệnh tiềm tàng của virus và sự tiếp xúc trực tiếp giữa đàn lợn nhiễm và không bị nhiễm là một con đường truyền bệnh quan trọng. 6 Qua chất tiết từ tinh dịch hay âm đạo khi giao hợp. 6 Qua sữa hay sữa non của thú mẹ truyền qua thú con, ngoài ra virus có thể xâm nhập qua nhau thai, truyền dọc từ thế hệ này sang thế hệ khác. 6 Qua những vật dụng dùng trong thú y đã bị nhiễm (ví dụ như kim tiêm, ống tiêm). 9  6 Virus có thể tồn tại trong thịt heo đến 5 tuần. Những con chó ăn thịt heo nhiễm cũng bị nhiễm và chết. Tỷ lệ nhiễm bằng con đường ăn thịt heo bị nhiễm cao hơn là bằng đường hô hấp. 6 Lan truyền nhờ gió từ nông trại này đến nông trại khác có thể xảy ra dưới điều kiện thích hợp. (báo cáo ở Anh có thể tới 2 km). 6 Virus có thể tồn tại nhiều tuần trong một vũng nước đọng, trên cỏ, ổ rơm. Vì thế, môi trường truyền nhiễm từ bầy đàn này sang bầy đàn khác cần phải được quản lý, đặc biệt là những nơi rác thải không được thu gom và xử lý. Vai trò của côn trùng đang được điều tra, loài gặm nhấm cũng đóng một vai trò là một nguồn nhiễm. Vai trò của lợn hoang dã trong khu vực Thái Bình Dương như là nguồn nhiễm đã thật sự bùng nổ. (a, f) Triêu chứng lâm sàng D Ở heo, ADV thường lan nhanh trong các bầy đàn mới nhiễm. Triệu chứng lâm sàng ở lợn thường biểu hiện khác nhau tùy theo lưa tuổi. • Heo con nhỏ hơn 2 tuần tuổi: diễn biến lâm sàng tiến triển nhanh, tỷ lệ chết cao có khi tới 100%. Sốt cao trên 41oC, ủ rũ, 10  lông dựng đứng, da tím tái, lợn gầy sút nhanh, có triệu chứng thần kinh, run rẩy, đi lảo đảo, đi vòng quanh, sau đó xuất hiện những cơn co giật, đạp chân trong không khí là động tác đặc trưng của bệnh, kiệt sức, tử vong trong vài giờ. Có thể thấy heo nôn mữa, chảy nhiều dãi, đôi khi có con đi lỏng. • Những con heo lớn hơn có biểu hiện: sốt, suy nhược, trầm cảm, nôn, khó thở, xuất hiện bệnh tích từ hệ thần kinh trung ương, dáng đi theo kiểu ngỗng, thờ thẫn, co cơ, mắt giật , tê liệt. Tỉ lệ chết 20-100%. • Heo con cai sữa có những biểu hiện giống trên với những triệu chứng về đường hô hấp (ho, ắt xì, thở nặng nhọc, viêm kết mạc) dễ thấy hơn. Tỷ lệ tử vong 5-10%. • Những heo nái và heo đực giống: thường không quan sát thấy triệu chứng thần kinh, con vật ủ rũ, sốt cao, ho, thở khó kéo dài 5-10 ngày, lợn bị gầy sút nhanh chóng, tỷ lệ chết thấp 6 Ở những nái mang thai có biểu hiện về rối loạn sinh sản như sẩy thai, thai yếu, thai chết lưu trong bụng. phần lớn những thai chết, thai sẩy có bệnh tích điển hình là hiện tượng hoại tử gan, lách, tuyến thượng thận, hạch lâm ba ruột. Neurological disorders in piglets. 11  (Photos Copyright FAO 1997) D Ở bò chủ yếu biểu hiện ở 2 thể: • Thể kích thích: đặc trưng nhất là ngứa nhiều ở một vùng hay nhiều vùng ở các vùng da đầu, ngực, đùi. • Thể bại liệt: con vật suy nhược, chướng bụng, táo bón, bại liệt, chảy nhiều dãi, có trường hợp bị liệt bụng. D Ở chó và mèo: • Ở mèo, triệu chứng đầu tiên là rối loạn vận động, con vật bồn chồn, kêu nhiều, tiếng kêu khan khan, sau đó run rẩy, liệt toàn thân và chết nhanh. • Ở chó biểu hiện ngứa nhiều ở mõm, liệt cơ họng. • Ở những loài khác thường thì chỉ những vùng bị thương bị phù,sung huyết ở tủy sống (a, HTM) g) Bệnh tích White to yellow necrotic foci on spleen (pig). (Photos Copyright FAO 1997) D Bệnh giả dại ít có bệnh tích đặc trưng. • Có những điểm hoại tử trắng ở gan, lách. • Phổi xung huyết, phù. 12  • Thùy tim và thùy đỉnh có các vết viêm màu đỏ sẫm. • Hiện tượng phù nề vách ngăn giữa các thùy là rất phổ biến. (a, M) 2) Phân lập virus trên môi trường tế bào D Cách xác định sự vấy nhiễm của PRV thường dựa trên sự phân lập virus trên các môi trường tế bào cùng với sự xác định bằng kỹ thuật miễn dịch huỳnh quang. Quy trình này được thực hiện trong vòng từ 2-5 ngày, dựa trên thời gian xuất hiện cytopathic effects (bệnh tích tế bào-CPE). D PRV có thể được nuôi cấy trên một phổ rộng các loại tế bào như tế bào phổi thỏ (rabbit lung-ZP), tế bào thận thỏ (rabbit kidney- RK13), tế bào thận chuột Hamster (Hamster kidney-BHK21), tế bào thận heo (porcine kidney-PK15), tế bào thận khỉ xanh (green monkey kidney-GMK), tế bào phổi chồn Vizon (mink lung-MK), tế bào thận chồn furo (ferret kidney-FK), tế bào phôi bào thai cừu (ovine fetal lung-OFL), (bovine turbinate-BT), tế bào thận phổi gà tây (turkey embryo kidney-TEK7,13,17,21). Tuy nhiên các dòng tế bào BT, PK15 được sử dụng rộng rãi để phân lập và chẩn đoán PRV. (b) a) Chuẩn bị mẫu D Những mẫu vật có thể được sử dụng để chẩn đoán ADV bao gồm tủy sống, phổi, lá lách, gan, thận, hạch bạch huyết, niêm mạc họng, amidam được lấy từ những con 13  heo nghi ngờ nhiễm ADV. D Lấy mẫu thí nghiệm ở heo • Mẫu máu: lấy ở tĩnh mạch cổ hay ở tĩnh mạch tai bằng xylanh tự động. • Dịch mũi: khi con vật có biểu hiện rối loạn hô hấp (khó thở, khò khè…) lấy tăm bông ngoáy vào hốc mũi. D Thời gian lấy mẫu • Khi con vật biểu hiện những triệu chứng lâm sàng, lấy mẫu ở các lỗ tự nhiên. • Khi con vật đã chết (mới chết trong vòng 6 giờ) mổ ra, biều hiện bệnh tích ở đâu thì lấy mẫu tại đó (đường hô hấp, tiêu hóa, thần kinh). D Những điều cần lưu ý khi lấy mẫu: • Lấy máu ở tĩnh mạch cổ khi cần lượng máu nhiều. • Lấy máu ở tĩnh mạch tai khi không cần nhiều máu. • Đối với nái mang thai nên lấy ở giai đoạn heo mới sinh 2-3 ngày. • Khi lấy mẫu cần có dụng cụ cố định con vật, đeo găng tay. • Khi lấy mẫu bằng tăm bông để tăm bông trong ống nghiệm vô trùng cho vào lọ chứa dung dịch chuyên chở và bẻ đoạn que nơi tay cầm. 14  • Khi lấy mẫu máu thì ta nên cho chất kháng đông vào. Có 3 loại chất kháng đông: EDTA (Ethylene Diamine Tetra Acetate), Heparin, Sodium Citrate, trong đó EDTA thường được sử dụng nhất vì ít gây ảnh hưởng đến các tế bào máu. • Cách lấy mẫu mô: lấy một nửa phần mô có bệnh tích, một nửa phần giáp bệnh tích. D Cách bảo quản mẫu: • Mẫu để trong bình, túi sạch. • Dùng bình đá nếu mẫu được chuyển về phòng thí nghiệm ở khoảng cách gần. • Dùng đá khô bảo quản tối đa trong 7 ngày do đá khô ít chảy nước và ít ảnh hưởng đến bệnh phẩm. Mẫu được giữ ở -70oC trong glycerol 50%. D Cách xử lý mẫu: lấy mẫu sao cho tạo được huyễn dịch 10-20%. • Lấy tỷ lệ mẫu và HBSS (Hanks’ balanced salt solution) là 1 phần mẫu, 9 phần HBSS, mẫu được đồng nhất trong HBSS thành huyễn dịch 10% bằng máy Laboratory Tissue Pulverizer. Sau đó ly tâm 1000 vòng/phút ở 4oC trong 30 phút để loại bỏ mãnh vỡ của mô. Dịch nổi bên trên được gạn ra và dự trữ ở - 70oC. Hoặc ta có thể nghiền bằng tay. • Mẫu mô được để ngay góc cối gần chỗ miệng lấy ra. Nếu mẫu mềm thì nghiền trực tiếp. Nếu mẫu cứng thì nghền bằng thủy tinh nhuyễn để tách được các tế bào đơn. 15  • Lấy 9 phần HBSS cho vào nghiền tiếp, nghiền xong cho vào ống nghiệm. • Sau đó cho mẫu vào tủ lạnh rồi đem ra thực hiện 1-2 lần để tế bào vỡ ra và ta thu hoạch virus. • Sau đó lọc lấy nước trong (ly tâm) cho vào lọ khác có nắp, cho kháng sinh vào (penicillin, streptomicine) để trong 30’-1h, sau đó lọc qua màng lọc 0.2 um và đưa vào môi trường tế bào. • Mẫu huyết thanh cho qua lọc 0.2 um và đưa vào môi trường tế bào. b) Chuẩn bị môi trường tế bào D Cả hai loại tế bào PK-15 và BT được phát triển trong môi trường tối thiểu của Eagle với muối, 8% huyết thanh thai bò, penicillin (100 đơn vị/ml), streptomicine sulfate (100 ug/ml), fungizone (1 ml), gentmicine (50 ug/ml). D Mỗi giếng của đĩa 24 giếng được cho vào 1 ml dịch huyền phù tế bào chứa 1.5x105 tế bào. D 1 tấm phủ đường kính 12 mm được đặt vào mỗi shell vials (1-dram ca. 3.7 ml shell vials) sau đó cho vào đó 1ml dịch huyền phù tế bào chứa 1.0x105 tế bào. Để dễ thao tác, shell vials được đặt vào trong các giếng của một đĩa 24 giếng rỗng và sau đó được phủ lên bằng một đĩa 24 giếng khác. Đem đi ủ ở 37oC có 5% CO2 thường trong 3 ngày. (b) c) Chẩn đoán ADV bằng Shell Vial Assay (SVA) D Các shell vial chứa các tế bào BT hay PK15 được cho vào 0.2 ml mẫu đã được chuẩn bị. Sau đó nó được đem đi ly tâm với tốc độ 700 vòng/ phút trong 60 phút ở nhiệt độ 30oC. D Sau đó các shell vial được rửa với HBSS và thêm vào 0.5 ml MEM chứa 4% huyết thanh thai ngựa (fetal horse serum-FHS). Thêm vào 16  1 vial chứa mẫu không nhiễm (mock-infect cell) vào để làm đối chứng âm. D Các shell vial sau đó được ủ ở 37oC trong không khí có 5% CO2 và được quan sát bệnh tích đặc trưng trong các khoảng cách thời gian là 8 giờ đồng hồ. D Sau khi xuất hiện CPE, tế bào một lớp trong các shell vial được trộn trực tiếp với kháng thể nhuộm huỳnh quang. Sau đó các tấm phủ được nhẹ nhàng loại ra bằng cách sử dụng cái kẹp. Các tấm phủ được hơ khô, để ở rìa slide kính, và kiểm tra huỳnh quang. (b) d) Chẩn đoán ADV bằng 24-Well Plate Cell Culture Assay D Các giếng chứa tế bào một lớp PK15 hay BT được cho vào 0.5 ml mẫu và ủ ở 37oC trong một giờ để virus hấp thụ. Sau khi rửa với HBSS, 1.5 ml môi trường tối thiểu chứa 4% huyết thanh ngựa chữa được cho vào và đem đi ủ ở 37oC trong không khí có 5% CO2. Thêm vào 1 vial chứa mẫu không nhiễm (mock-infect cell) vào để làm đối chứng âm. Đĩa dược quan sát dựa trên chỉ tiêu sự xuất hiện bệnh tích tế bào mỗi ngày trong 7 ngày. D Những giếng có xuất hiện bệnh tích được xử lý với kháng thể gắn huỳnh quang. D Môi trường nuôi cấy được loại bỏ và các tế bào một lớp bị nhiễm được rửa với phosphate buffer saline (PBS), pH 7.2. Tế bào được vét với vài giọt PBS bằng một pipet chuyển, và huyền phù tế bào được cho vào một cái giếng có vòng đen (black-ringed well) đường kính 7 mm trên một slide kính nhiều giếng (multiwell glass slide). D Slide kính được sấy khô hoàn toàn và sau đó trộn với acetone trong 10 phút. 17  D 1 giọt của dung dịch pha loãng 80 lần kháng thể IgG đánh dấu huỳnh quang của ADV được cho vào mỗi giếng, và slide kính được đem ủ ở 37oC trong 30 phút trong một cái hộp ẩm (moist champer). D Sau khi rửa với PBS (pH 8.5) trong 5 phút, tế bào được nhuộm thêm với dung dịch Evan’s blue trong một phút và rửa dưới giọt nước, và sấy khô. D Một tấm phủ được đưa vào slide kính sau khi đã cho vào một giọt dung dịch gồm 50% glycerin và 50% PBS, pH 7.2 vào mỗi giếng. D Slide kính được quan sát bằng kính hiển vi huỳng quang. (b) PRV infected cells-CPE (h) e) Thử nghiệm của Rafique A. Tahir, Sagar M. Goyal D 2 ông thử nghiệm với 244 mẫu do phòng thí nghiệm chẩn đoán thú y ở Minnesota cung cấp. Mẫu được lấy từ những con heo nghi ngờ nhiễm bao gồm não, amidant, và phổi. Thử nghiệm được thực hiện bằng 2 phương pháp SVA và 24-well plate cell culture. D Kết quả đạt được: • Trong 244 mẫu được xác định, 118 (48.4%) mẫu được xác định là dương tính với phương pháp 24-well plate cell culture, 121 (49.2%) được xác định là dương tính với SVA. • Trong 118 mẫu dương tính với phương pháp 24-well plate cell culture thì có 113 (95,8%) mẫu là dương tính đối với dòng tế bào BT, 117 (99,2%) mẫu là dương tính đối với dòng tế bào PK15. 18  • Trong 121 mẫu dương tính với SVA thì có 113 (93,4%) mẫu là dương tính đối với dòng tế bào BT, 121 (100%) mẫu là dương tính đối với dòng tế bào PK15. • 24 giờ sau khi cấy mẫu vào, 91 (75.2%) mẫu có bệnh tích dương tính đối với SVA, trái lại chỉ có 15 (12.7%) mẫu là dương tính đối với phương pháp 24-well plate cell culture. (b) III. Kết luận D Từ kết quả thí nghiệm của Rafique A. Tahir, Sagar M. Goyal ta thấy phương pháp SVA nhạy và nhanh hơn so với phương pháp 24-well plate cell culture. D Cũng như thế tế bào PK15 nhạy hơn tế bào BT trong việc phát hiện ADV. (b) IV. Tài liệu tham khảo 1) Tiếng việt (a) Tủ sách khuyến nông phục vụ người lao động-NXB lao động: Những điều cần biết về một số bệnh mới do virus, trang 14-18. 2) Tiếng anh (b) Rafique A. Tahir, Sagar M. Goyal: 1995, Rapid detection of pseudorabies virus by the shell vial technique. J Vet Diagn Invest 7: 173-176. 19  (c) United States Deparment of Agriculture Animal and Plant Health Inspection Service Veterinary Services- Center for Epidemiology and Animal Health- National Surveillance Unit Fort Collins, CO: National Pseudorabies Surveillance Plan Final Draft (d) United States Department of Agriculter- Animal and Plant Health Inspection Service Technical Bulletin No 1923: Pseudorabies (Aujeszky’s Disease) and its Eradication (e) Carlos H. Romero, Paul N.Meade và ctv- Journal of Wildlife Disease, 37 (2), 2001, pp 289-296: Venereal Transmission of Pseudorabies Viruses Indigenous to Feral Swine (f) Hans Nauwynck, Sarah Glrieux và ctv, 2006- review article: Cell biological and molecular characteristics of Pseudorabies virus infections in cell cultures and in pigs with emphasis on the respiratory tract, page 230-234. (g) OIE Terrestrial manual 2008- chapter 2-1-2- Aujeszky’s disease, page 145. (h) A. Tatsanakit, A. Rungsipipat và ctv: In vitro efficacy of an organic disinfectant citrex on selected swine viruses (i) Harald Granzow, Frank Weiland và ctv- Journal of virology, Mar 1997, page 2072-2082: Ultrastructural analysis of the replication cycle of Pseudorabies virus in cell culture. 3) Trang web

Các file đính kèm theo tài liệu này:

  • pdfhehf_3912.pdf
Luận văn liên quan